Guten Morgen
Gestern war wieder einmal experimentieren auf dem Programm, Primärfluoreszenz stand dem Frühlingsverlauf gemäß auf dem Programm ...
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures007/170938_65122748.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures007/170938_52786977.jpg)
Sind zwei Beispiele aus der Serie ...
Aufgenommen am Olympus BHS mit der HBO 100, Kamera Nikon D7100 (kann mit diesen Motiven deutlich besser wie die Canon-Gehäuse) -> der nicht vorhandenen Tiefpass-Filter bringt mehr Details zu tage ...
Ich habe aber auch ein paar offene Fragen und würde mich freuen dazu Eure Erfahrungen mitgeteilt zu bekommen:
Da es sich um Frischschnitte handelt habe ich drei Versionen ausprobiert:
1.) 100% Glycerin
2.) 1 : 1 Wasser/Glyceringemisch
3.) zuerst Wasser, dann in das Wasser/Glyceringemisch
Mir geht es um die Vermeidung von Luftblasen in der Zellstruktur und da habe ich keine Lösung (weniger geht problemlos indem ich bei der Lösung 3 das Gemisch neben den Schnitt setze und es selbst einzieht ...
Was mich aber total wundert - mein so geliebter "Exi" versagt da vollständig. Unterdruck auf den uneingedeckten, am Objektträger liegenden Schnitt bringt keine Verbesserung bei 1 und 2. Der Exsikkator funktioniert aber bestens, bei zu früh öffnen ist ein Objektträger bis in den Deckel befördert worden (implodiert) ...
Ich habe in der Literatur dazu auch keine Hinweise gefunden, wie geht es Euch mit diesem Thema, welchen Trick habt Ihr auf Lager ???
Die Schnitte waren ca. 0,045 mm dick ...
Bin gespannt, liebe Grüße
Gerhard
Liebe KollegInnen
Noch ein weiteres Beispiel, das ist nach ca. 15 Stunden nach dem Eindecken fotografiert worden (Methode 3), vom Wasser ist schon einiges verdunstet, das Objekt ist aber immer noch komplett eingeschlossen ...
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures007/170946_16782441.jpg)
Liebe Grüße
Gerhard
Hallo Gerhard,
für meinen elektrischen Stabmixer gab es das folgende Zubehör: http://www.amazon.de/Braun-Multiquick-5000-Fresh-Stabmixer/dp/B000A1UOH8
Die Schnitte kommen bei mir in die gewünschte Flüssigkeit in einem Blockschälchen. Dann rein in den kleinen Behälter und mit dem Stabmixer Luft raus saugen. Nach einem Weilchen sind alle Luftblasen verschwunden. Der Unterdruck darf nicht zu hoch sein. Bei leicht flüchtigen Lösungen wie Ethanol muss man vorsichtig sein, sonst ist das Blockschälchen hinterher leer >:(
Das Ergebnis sieht dann wie folgt aus:
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures004/170971_58307880.jpg)
20x, Primärfluoreszenz, HAL 100 Auflichtbeleuchtung mit Zeiss Filtersatz 9, eingedeckt mit Wasser
Mehr Details hier: https://www.mikroskopie-forum.de/index.php?topic=12719.0
Herzliche Grüsse,
Eckhard
Hallo Eckard
Ein beachtliches Ergebnis - muss es einmal mit reinem Wasser versuchen - in der Zwischenzeit frage ich mich warum in der Literatur immer wieder bei diesem Thema Glycerin beschrieben ist. Da es ja nicht um Dauerpräparate geht doch eigentlich überflüssig ...
Oder übersehe ich da etwas?!?
Muss schauen ob ich da am langen Wochenende noch was hinbekomme .-)
Liebe Grüße
Gerhard
Lieber Gerhard,
Glycerin hat keine Eigenfluoreszenz und es verdunstet nicht wie Wasser, das wegen der Blasenbildung eher nicht geeignet ist. Allerdings macht Gly auch gerne Blasen, die aber bei leichtem Erwärmen nach oben steigen und platzen. Dann erst DG auflegen!