Hallo zusammen!
Weil ja immer alles anders kommt als man denkt, werd ich es vor dem Urlaub nicht mehr schaffen, meine Formalinfixierten Proben noch in Paraplast zu bringen und als Block aufzubewahren.
Nun frage ich mich, was ist besser für die Proben: Sollen sie in der Formalinlösung schwimmen bleiben (Stückchen von Schwamm, etwa 6% Formalin in Aquariummeerwasser, aktuell im Kühlschrank), oder besser dehydriert aufbewahrt werden (bis 100%Isopropanol könnt ich noch kommen, nur für das Infiltrieren mit Paraplast wird die Zeit zu knapp (ich verwende immer den Xylolfreien Isopropweg)). Es geht um einen Lagerzeitraum von etwa einem Monat.
Vielen Dank schonmal!
Nora
Hallo Nora,
ich habe nur Erfahrungen mit menschlichen und tierischen Gewebeproben. Hier sind Proben in 70% Ethanol stabil. Ich wässere formalinfixierte Proben und gehe dann stufenweise in 70% Ethanol. In Formalin oder 100% Alkohol härtet das Material doch sehr.
viele Grüße, Ralf
Hallo Ralf,
vielen Dank für die Antwort!
Ich werde jetzt wohl einen Teil in 100%Iso aufheben, und den Rest in 70%EtOH, und dann mal sehn ob ich einen Unterschied merke.
Mir ist noch eingefallen: Würde Einfrieren irgendwelche Vorteile bringen? 70%Alkohol sollte bei -18°C ja flüssig bleiben (?), oder sind da sonst Gewebeschäden zu erwarten?
Viele Grüße!
Nora
Nora,
Genau so wie Ralf macht, mache ich es auch. Eventuell kann statt Ethanol auch 2-propanol genutzt werden. Spater wenn das Gewebe eingebettet wird schneidet es sich prima.
Grusse Roald