Hallo zusammen,
Ich habe heute ein Streupräparat mit Material aus Irbit, Russland fertig gemacht. Das Material habe
ich von anne erhalten. Es ist Material welches kleiner 25µ ist.
Es ist sehr viel Bruch aber auch viele kleine Specis in dem Material. Ich habe das 100er Objektiv
rein geschraubt und nach etwas herum schauen diese Radiolarie? Sklerite? gesehen.
Ich stell es hier mal ein. Leider ist es sehr mühsam das Ding wiederzufinden wenn man es einmal verloren hat. Ich wollte es gern noch Auflicht fotografieren.
Gruss
Michael
Hallo Michael,
was immer es ist, Du hast es perfekt fotografiert. Als ich die Fraktion kleiner 25 my abgesiebt habe, dachte ich immer, der Michael wird da sicher viele Schätze drin finden.....
Vergiss aber nicht die große Fraktion, da sind riesige Besonderheiten drin.
lg
Anne
Hallo,
Naja eine riesige Besonderheit habe ich jetzt nicht aus der grösseren Fraktion, aber dennoch
vorzeigewürdig. Die "störende" Diatomeenschale habe ich drin gelassen, da sich Anaglphenbilder
nicht so leicht ändern lassen.
Es ist mit dem 100er Objektiv gemacht worden, da ich es momentan eh drin hab.
Das 2.te Bild ist ein Auflichtbild, nicht sehr berauschend.
Gruss
Michael
Hallo Michael,
das ist aber schon eine Besonderheit! Eine Solium exsculptum var. pentagonalis!!!
Lg
Anne
Hallo zusammen,
Wenn es eine Besonderheit ist, will ich es auch würdigen, in Anlehnung an "nikonsmallword". ;)
Nachtrag: auch mit hellem HG.
Gruss
Michael
Hallo Michael,
sehr schön Deine Rarität;
aber ich fürchte für den Kleinwelt-Wettbewerb müsste es dann doch in diese Richtung gehen:
OJ-Color-survey-1.jpg
(mit Fiji OrientationJ plugin gezaubert) ;)
Beste Grüße Stefan
Hallo Stefan,
Ja bunt isses, das dürfte mit mehreren überlagerten Bildern und deren mathematische Verknüpfung
etwas besser werden. Werde ich aber jetzt nicht machen um nicht den Thread mit dem selben Bild voll
zu machen.
LG
Michael
Hallo,
Hier habe ich eine unbekannte Form. Für mich ist es eine Mischung aus Diatomeen und einer Radiolarie bzw. Sklerit. So etwas habe ich zuvor noch nicht gesehen.
Gruss
Michael
Hallo Michael,
die letzte Diatomee habe ich auch gefunden und noch vieles andere mehr.
Bis jetzt kann ich sie aber noch nicht bestimmen.
Was man auch in der probe findet sind diese Dinger hier: Ebridian, Ammodochium speciosum.
Mehr dazu in diesem Paper:
deepseadrilling.org/29/volume/dsdp29_24.pdf
100-10.jpg
lg
anne
Hallo Michael,
ich habe die verbunden auch nochmal gefunden, aber geknickt.
lg
anne
Inzwischen weiß ich es ist eine Trochosira, evt. coronata.
100-17inv mit mb.jpg
Hallo,
@anne: Ja diese Schmuckring Dinger habe ich auch schon desöfteren gesehen.
@All
Hier habe ich eine "Kittonia tripedia Chenevierre", wie ich gesehen hab auch eine seltene Art.
Diese befindet sich in einem Streupräparat und zudem fast am DG Rand :o
Ich habe das Ding mit all meinen Möglikchkeiten ins Bild gesetzt, daher nun die Folge von Bildern:
Zunächst einige Übersichtsbilder mit dem 40er und 60er Objektiv in 2 und 3D (Anaglyphenbild)
Rus-Kit-trip-40x-1600px.jpg
Rus-Kit-trip-3D-1600px.jpgKittonia-tripedia-60X-1600px.jpg
Kittonia-tripedia-60X-3D-1600px.jpg
Dies hier ist ein Bild der Siebe in den Poren, entstanden mit dem 100er Objektiv bei Hellfeld und Grünfilter.
Rus-Kit-tripedia-Poren-1600px.jpg
Jetzt frage ich mich, soll ich das Präparat so lassen wie es ist? Oder soll ich es heraus lösen und ein Einzelpräparat draus machen?
Gruss
Michael.
Hallo Michael,
Du scheinst die Kittonias anzuziehen wie ein Magnet! Das ist schon wieder eine Sensation! Bisher wurde diese nur in einer bestimmten Schicht von Kamishlov gefunden.
Lg
Anne
Dear Michael,
You are amazing!! Great results!
Bill
Interesting forms and very nice images of them Michael!
Hallo,
Es war reiner Zufall, das ich diese im Präparat gesehen habe. Wo eine ist kann eine weitere nicht weit sein... !
Das heisst ich werde das Material Stück für Stück durchsuchen um eine weitere zu finden um daraus ein Einzelpräparat fertigen.
Doch zunächst Bilder einer Entogoniopsis polycistinora die ich ebenfalls in dem Material gefunden habe. Diese ist noch nicht eingebettet.
Hellfeld-Invertiertes Bild
Entogoniopsis-polycistinora-1600px.jpg
Anaglyphen Bild:
Entogoniopsis-polycistinora-3D-1600px.jpg
Und einmal einmal in Farbe:
Entogoniopsis-polycistinora-farbig-1600px.jpg
Gruss
Michael
Hallo Michael,
von der Entogoniopsis habe ich 4 komplett verbundene gefunden!
Kittonia noch nicht, aber ich bin noch dran den Bodensatz, das was beim Abfüllen im Becherglas bleibt zu untersuchen. Du bist schon bei der "schönen" Probe.
Ich habe hier ein paar unspektakuläre Diatomeen aus der Probe, alle "dreieckigen", und derer sind es viele, habe ich noch nicht beachtet.
Zuerst ein Silicoflagellat, ich komme nur bis zur Bezeichnung Naviculopsis:
100-18.jpg
100-19.jpg
Dann für mich eine kleine Besonderheit, kein gutes Bild, da überlagert, sollte jedoch für einen Eindruck reichen: Corethron penicillus:
100-8.jpg
100-14.jpg
Ein Bruchstück von einer Diatomee die früher als Kittonia galt, nun ist sie ein Keratophora granualata:
100-13.jpg
Rhizosolenia clavigera, ein Fortsatz:
100-20.jpg
Diese hier würde ich für Anuloplicata ornata halten:
100-21.jpg
Und diese hier für Paralia selecta:
100-22.jpg
Und dann noch eine unbekannte Diatomee.
100-7.jpg
Sowie Solium exscultum und Typen von Melosira /Paralia? in allen Größen und Varianten.
100-4.jpg
lg
anne
Guten Abend Anne,
beeindruckende Bilder
Gratulation
Gruß Peter
Hallo zusammen,
Ja das sind gute Aufnahmen. Die Corethron penicillus habe ich ebenfalls schon gesichtet. In der Probe
sind wirklich sehr viele runde und dreieckige Diatomeen enthalten. Andersartige fallen direkt auf und werden
von mir seperiert um die dann zu mikroskopieren.
LG
Hallo Michael
spannend, dass du im Material von Irbit 'tripedia' gefunden hast!
sonst kommt der Typ nur in einer speziellen Schicht in Kamyschin vor...
Infos zum vermutlichen Fundort findet man zB. hier:
https://www.researchgate.net/figure/Sampling-sites-at-Kamyshlov-Shadrinsk-Irbit-and-Brusyana-diatomite-deposits_fig2_320376020
https://www.researchgate.net/publication/326785509_Variability_in_distribution_of_major_and_trace_elements_in_Lower_Eocene_siliceous_sections_of_the_Transuralian_Region_Russia
Gruss Martin
Hallo martin,
hätte ich das gewusst hätte ich nicht direkt ein Streupräparat gemacht. Aber um ein Eindruck zu bekommen, was da drin ist macht man es ja.
Hier habe ich eine Keratophora granualata wiedermal in bunt. Es ist eine überlagerung von 2 Bildern.
Als Grundlage habe ich das normale welches mit dem 40er Objektiv gemacht worden ist, genommen.
Den farbigen Effekt ist am besten bei dem 20er Objektiv. Auf das Leuchtfeld habe ich die Kante
eines nur geschnittenen OT gelegt. Bei verstellen der Kondensorhöhe erhält man einen breiten farbigen
Streifen, in etwa so wie man es bei DIC kennt (hab ich aber nicht).
Dieses farbige Bild, habe ich auf der erste gelegt und verrechnen lassen.
Gruss
Michael
I am late to the game since my package was stuck in US customs for over two months.
Here is my first image of a form from Irbit. Ideas as to identity of the long one?
Best to all,
Bill
Dear Bill,
it is this one:
https://fossil-diatoms.com/atlas/index.php?page=entry&id=20&requestedBy=by-genus&p=9
lg
Anne
Hallo Michael,
bei Keratophora gilt es noch herauszufinden, ob es sich um K. granulata oder K. nitida handelt. Ich kenne die Unterschiede noch nicht.
Lg
Anne
Hallo zusammen,
Hier habe ich vermutlich eine Trinacria simulacrum v. grossepunctata. Hier der Link zur Datenbank
http://symbiont.ansp.org/dntf/images/cache/NSF%20cards_T/Trinacria/Trinacria_0048.jpg (http://symbiont.ansp.org/dntf/images/cache/NSF%20cards_T/Trinacria/Trinacria_0048.jpg)
Aufgrund des Bildes aus der Datenbank bin ich mir da recht sicher.
Zunächst eine von oben und der Seite:
Triancria-simulacrum-1600px.jpg
Und von oben als Anaglyphenbild:
Triancria-simulacrum-3D-1600px.jpg
Gruss
Michael
Noch was,
Hier habe ich ein Bruchstück; sehr wahrscheinlich einer Kittonia, welches ich gerade im Wasser
gesichtet habe.
LG
Hallo zusammen,
Hier habe ich beim durchsuchen dieses "Schiffchen" entdeckt. Keine Ahnung was das ist.
Es ist sehr unscheinbar erst mit etwas Seitenlicht habe ich es gesehen.
Vielleicht weis jemand was es ist.
Nachtrag:
Das 2.te Bild ist das wie ich es im Wasser auf dem OT gesehen habe.
LG
Michael
Hallo Michael,
eine Rutilaria denke ich.
Genaue Bestimmung ist schwierig.
Kann auch was anderes sein, sieht man von der Seite schlecht.
Lg
Anne
Ja danke anne, das kann gut sein. Hab ich gar nicht dran gedacht. ::)
I think this is Arachnoidiscus clarus with just a little damage. Please correct me if I am wrong.
Greetings,
Bill
And here's another one, possibly Actinoptychus pericavatus?
See: https://fossil-diatoms.com/atlas/index.php?page=entry&id=48&requestedBy=by-genus&p=2
Bill
Hallo,
Hier habe ich nochmal die Entogoniopsis polycistinora, von schräg oben aufgenommen und farblich überlagert... soll aber nicht Standart werden.
Gruss
Michael
Hallo zusammen,
ich möchte hier noch diesen Ausschnitt eines Papers von Ross & Sims einfügen.
Dies klärt die Synomyme Keratophora nitida und K. granulata und weitere auf.
Im Ergebnis heißen sie alle Keratophora nitida.
lg
anne
bulletinofbritis13britlond_0352.jpg
Hallo zusammen,
Gestern ist mir beim durchforsten des Materials diese Schale aufgefallen.
Welche es genau ist, kann ich nur vermuten Navicula acuta (Skvortzow n. sp. 1937) oder N. amphibola.
Macht es eigentlich Sinn von Seitenansichten nochmals eine 3D; Anaglyphenansicht zu erstellen?
Generell mache ich es, aber stelle es nicht immer ein.
LG
Michael
Here is a small arrangement of forms from Irbit. A couple are broken but I thought they were interesting. Single images taken with a Leitz NPL Fluotar 10X/0.30 Phaco objective. Images in brightfield, darkfield and phase contrast.
Bill
Hello Bill, that is an very nice Collage. I like the darkfield Picture!
Hallo zusammen,
Hier habe ich die Keratophora nitida, einmal als einzelne Schale und einmal als verbundene Schalen.
Die Bilder Stacks sind mit dem 40er Objektiv und bei trockenem Exemplaren gemacht worden.
Ich würde die einzelne Schale präparieren und zwar mit den Füssen nach oben, sprich zum Deckglas hin.
Das Problem ist nun das die beim präparieren; auf DG kleben; nicht stehen bleibt. Die Füsse würden zudem auch nur an einem winzigen Punkt kleben. Und das würde beim eindecken garantiert abreissen.
Ich hatte jetzt die absurde Idee die Schale auf die Füsse zu stellen und darüber ein oder 2 Spinnwebenfäden zu spannen, damit die aufrecht stehen bleibt.
Alternative wäre die an eine andere Diatomee oder Gürtelring anzulehnen.
Wie würdet ihr es machen?
LG
Michael
Hallo Michael,
wie immer, tolle Bilder!
Idealerweise sollte sie auf den Beinchen stehen, wie Kittonia elaborata. Da wir im Durchlicht fotografieren, ist dann die Oberfläche der Schale am Ende des Fokusbereiches.
Zudem könnte man im Durchlicht ja durch die Schale durchfotografieren, also auch alles erfassen wenn sie auf der Schale steht. Ich denke es werden sich in dieser Probe genug Diatomeen dieser Art finden um zu experimentieren. Ich stelle mir diese Frage oft bei den dreieckigen Formen die auf langen Beinchen stehen. Stellt man diese auf die Beine und liegt daneben eine flache Diatomee, ist die Fokusebene völlig unterschiedlich.
lg
Anne
Hallo anne,
Danke, man lernt auch bei picolay nicht aus. Da kann man auch die 3D Bilder von allen Seiten rechnen lassen.
Man braucht dazu aber recht gute Bilder als Ausgangsmaterial.
Da hast du sicherlich recht, aber da wird es u.U. mit dem 100er schwierig. Ich will die auf die Füsse stellen, damit ich mit dem 100er diese ungestört ins Bild bekomme. Evtl. kann ich ja mein Mikromanipulator dazu nutzen, der die Schale solange hält bis der Debes Kleber trocken ist. Der Debes Kleber denaturiert auch bei 180 Grad und wird danach vom PLX nicht angelöst.
Es soll ja ein Einzelpräparat werden. Klar gibts inzwischen REM Aufnahmen davon, aber was ich mir in den Kopf gesetzt habe, kommt da sehr schwer wieder raus.
Gruss
Michael
Hello Michael,
I have found also that it can be difficult using "wet" Debes to keep certain diatoms flat instead of them tilting to one side. The "dry" Debes is much better for these since when you wet the adhesive using your breath you sometimes can have a few seconds to reposition the form if you are careful. I think if you denature the "dry" Debes it will also work for your Pleurax mountant. Didn't you try that already?
Greetings,
Bill
Hello Bill,
Yes, difficult shapes are pulled to the side in the wet medium by capillary forces.
I tested it with standard diatoms. They didn't move from their position. To test difficult shapes, you can also place standard diatoms on their smallest side / upright and see if they stay in position after adding PLX.
Regards
Michael
Hallo Michael,
ich hatte nicht daran gedacht , dass Du den "wet Debes" benutzt.
Ich benutze ihn nicht und bin beim klassischen Debes geblieben. Vorerst.
Hast Du kein Einbettmittel mehr welches mit dem normalen Debes sicher funktioniert?
lg
anne
Hallo Anne,
Ich hätte noch Darax. Der funktioniert ja mit Debes ohne langes, hohes Erhitzen.
LG
Michael
Hallo,
Um die Detail Ansicht des Füsschens ins Bild zu bekommen, habe ich ein Präparat angefertigt. Dies war
einfacher als zunächst befürchtet. Im trockenen Zustand fiel es ja immer auf die Seite.
Um das Präparat fertig zu stellen, habe ich ein DG mit Debes KG versehen. Als nächstes habe ich ein Stück dünnen Gummischlauch etwa in die nähe des DGs gebracht. Dazu ist ein Mini Schraubstock ganz gut. Das andere Ende hatte ich im Mund. Mit der feinen Legeborste habe ich die Kieselalge auf die Beine gestellt und in Position gehalten. Im selben Moment habe ich vorsichtig in den Schlauch geblasen. Durch die Atemluft wird der Debeskleber wieder klebrig. Bis der KG wieder trocken war, habe ich es noch ein paar Sek. mit der Borste gehalten. Als Medium habe ich Darax genommen, der ist ja "kompatibel" mit dem Medium. Bei Pleurax muss man es erst eine Zeit recht hoch erhitzen, damit der KG nicht vom PLX gelöst und die Diatomee davon treibt.
Gruss
Michael
Dear Michael,
Excellent work as always!
Greetings,
Bill
Hallo Michael,
wann erscheint dein Buch
"Micro- and Nanomanipulation Methods" bitte ;D
Beste faszinierte Grüße Stefan
And the winner is........
Michael!!!!
Hallo,
Ein Buch zur Mikromanipulation... ich denke da reicht ein Faltblatt, so schwer ist das alles gar nicht ;-) Es gibt noch weitere und auch bessere Experten auf dem Gebiet, denk ich.
Und ob ich jemals mit meinen Bildern was gewinne, steht auch in den Sternen. Gut ich habe auch nie was eingereicht. Ich habe immer das Gefühl da feht noch das letzte Quäntchen an Brillianz.
LG
Michael
Lieber Michael,
jetzt stell Dein Licht nicht allzu sehr unter den Scheffel. Staunend betrachte ich mir schon eine ganze Weile Deine Aufnahmen und bewundere, was Du da zauberst; das ist einfach der Wahnsinn -und wenn man dann noch die benutzte Ausrüstung bedenkt!
Hallo Michael
Ich kann mich Jürgen B. nur anschließen. Deine Fähigkeiten und Fertigkeiten sind schon Spitze. Auch das GIF von Keratophora nitida beeindruckt mich sehr. Hierbei muß man Heribert und sein Picolay natürlich auch sehr anerkennend erwähnen. 8)
Gruß von Siegfried
----
Als jemand der sich schon beim Legen von Foraminiferen fast die Finger bricht, kann ich über die hier gezeigten Fähigkeiten auch nur staunen.
Von den fotografischen Fähigkeiten ganz zu schweigen. Wunderschöne Aufnahmen dieser Kunstformen der Natur!
Das "farbüberlagerte" Bild der Entogoniopsis polycistinora gefällt mir besonders. Würde ich mir glatt in's Wohnzimmer hängen.
Verrätst du uns wie man so etwas hinbekommt?
Grüße Holger
Hallo zusammen,
Wenn ich das so lese, scheinen die Bilder doch nicht so schlecht zu sein.
@Spectrum:
Wie ich es überlagert habe, ist in Anwort 19 beschrieben.
https://www.mikroskopie-forum.de/index.php?topic=49895.msg365075#msg365075 (https://www.mikroskopie-forum.de/index.php?topic=49895.msg365075#msg365075)
LG
Michael
Hallo zusammen,
Hier habe ich mal eine kleine Zusammenstellung von kleinen Formen die in dem Material vorkommen.
Alle Einzelbilder sind mit dem 100er Objektiv gemacht worden. Beim fotografieren, gibt es schonmal das Problem das das Innere von Poren beim Fokussieren von "hell" nach "dunkel" umspringt. Das ist hinter beim stacken sehr unschön. Ich weis aber nicht wie man dies umgeht oder ganz vermeidet.
Gibts da eine Lösung zu?
LG
Michael
Hallo Michael,
um etwas zu
Zitat von: Michael K. in November 05, 2024, 18:08:21 NACHMITTAGSgibt es schonmal das Problem das das Innere von Poren beim Fokussieren von "hell" nach "dunkel" umspring
beitragen zu können, noch bitte berichten, ob
- 100er Obj und /oder Kondensor geölt und welchen verwendest Du?
- die Hinterlinse (m. Hilfsmikroskop) des 100er Obj. auch gleichmäßig und bis zum Rand bzw ohne zentralen Fleck ausgeleuchtet wird (ggf.auch vorsichtig beim Fokussieren beobachten?
- Polarisation, und wenn ja, wie zum Einsatz kommt?
- Präp. eingedeckt? und auch sicher Medium in den Poren ist?
- dein beschriebener Umschlag nicht nur hinter sondern auch kurz vor dem Fokus, evtl in der anderen "Richtung": von hell zu heller auftritt?
- Du schon etwas zur Vermeidung ausprobiert hast?
Beste Grüße Stefan
Hallo Stefan,
Es war ein 100er Öl Objektiv. Benutzt habe ich den Standart Lomo Kondensor. Nichts spezielles. Den K. habe ich nicht geölt, da dies dann wirklich Öl gepansche ist. Ich habe ledeglich einen Tropfen Öl auf das DG gegeben. Pol. etc. war nicht drin. Wenn Luft in der Schale ist, wirkt es eh schwarz.
Das Umschwanken von hell nach dunkel tritt auch kurz vorm Fokus auf.
Gegenmassnahmen kann ich nicht ausprobieren, weil ich den Grund nicht kenne.
Ich kann mir das nur so erklären, das die Räder der Poren quasi Streulicht abgeben und dies zu den Effekten
führen.
Gruss
Michael
Hallo Michael,
das Hellfeldbild setzt sich ja aus ungebeugten Hauptmaxima und gebeugten Nebenmaxima zusammen; interferieren diese um eine halbe Wellenlänge (π) kommt es zur destruktiven Interferenz und Auslöschung (dunkel). Nun kommt es verstärkt bei hochaperturigen Objektiven zum Phasenumschlag im Bereich des Fokus (F), zudem noch zu zusätzlichen "Schwankungen" sog Phasenanomalien (Gouy Phase):
gouy phase.jpg
Um die Kohärenz und somit Interferenzfähigkeit herabzusetzen, würde ich mal mit Mattfiltern bzw Mattfolien an verschiedenen Positionen im beleuchtenden Strahlengang experimentieren: Filterhalter und weiter oben im Kondensor (unter der abschraubbaren Friontlinse) und da Du ja trocken arbeitest vor allem auch auf der Frontlinse des Kondensors. Diese schon länger bekannte Methode (geöltes Papier vor > 100Jahren) taucht immer wieder auf, als Jacksons "radiant field illumination" (hier (https://drive.google.com/file/d/1lOpWP6HPO8IjsmMZNbx8j24h9fPvIiBX/view) ab S A-40 gut beschrieben) oder neuerdings in mikroskopischem social media als "Kristiansen illumination".
Nebenbei leuchtest Du damit auch noch, Aperturblende offen, deine Objektivapertur besser aus, als trocken verwendet. Derart natürlich unterkontrastierte Einzelbilder stacken und Kontrast hernach anpassen.
Beste Grüße Stefan
Hallo,
dieser "Hell-/Dunkelumschlag" beim Fokussieren dickerer Phasenobjekte hatten wir ja schon an anderer Stelle kurz diskutiert. Ich denke dass Mattscheiben da nicht viel helfen, denn eine zumindest optimal eingestellte Beleuchtung mit homogener Aperturblendenausleuchtung erzeugt bereits eine maximal inkohärente Beleuchtung. Eine Mattscheibe bringt bei Köhlerbeleuchtung eigentlich nur etwas, wenn sie bei schlechter Konstruktion nicht optimal ausleuchtet, was natürlich bei entsprechend inhomogener Lichtquelle und fehlendem Diffusor der Fall sein kann. Das ist auch der konstruktive Schwachpunkt der Köhler-Beleuchtung.
Eine leichte Verbesserung dürfte das "Ölen" des Kondensors bringen, denn trocken ist die Wirkung bekanntlich so als würde man die Aperturblende etwas schließen und erzeugt damit kohärentere Beleuchtung. Eine Mattscheibe bringt da deshalb im Vergleich zum Öl nichts, weil das Licht aufgrund von unvermeidlicher Totalreflexion der Beleuchtungswinkel trocken nicht erhöht werden kann.
Das Grundproblem der Interferenz lässt sich aber nicht vermeiden.
Hubert
Hallo,
Vielen Dank für die Infos und die Physik die dahinter steckt. Testweise werde ich mal den
Kondensor ölen, aber ungern. Auch mit den Mattfiltern teste ich es mal. Physikalisch kann man es
sicher erklären, man muss es aber auch in der Praxis umsetzen können.
Gruss
Michael
Hallo zusammen,
Dieses "Ding" habe ich auch noch finden können. Ich habe es nur "Amphore" genannt weil es sehr grosse
Ähnliochkeit damit hat.
LG
Michael
Hallo "fossil Russians" fans,
nun habe ich endlich eine komplette gefunden.
Corethron penicillus (Grunow) Fenner (1994)
Aufnahme mit dem 100er Objektiv im Hellfeld.
lg
anne
Hallo Anne
Das ist natürlich ein ungewöhnlich ausgefallenes Exemplar einer Diatomee und die, ich sage einmal dünnen Fortsätze, auch noch ohne Bruch. Glückwunsch und danke fürs Zeigen.
Könntest du mir interessehalber die Anzahl der Fotos beim Stacken dieser Diatomee nennen?
lg von Sigi
Alle sind wirklich fantastisch, aber die letzte ist der absolute Clou.
Sieht aus, als wäre sie mit der Nostromo auf die Erde gebracht worden.
Wie alt werden diese Diatomeen eigentlich geschätzt?
Lieber Sigi,
das waren ca. 100 Bilder. Trotzdem sind noch etliche Stackfehler drin, aber die Grundform ist zu erkennen.
Lieber Peter,
Diese Proben sind immer mit großer Ehrfurcht zu betrachten, unteres Eozän, soweit mir bekannt, das wären ca. 55 Millionen Jahre. Daher ist der Erhaltungszustand unglaublich gut.
lG
Anne
Hallo,
Hier habe ich nochmal eine Arachnodiscus, Bill hatte schon mal eine eingestellt.
Das Bild ist aus 5 Einzelbildern zusammengesetzt worden. Jedes Einzelbild der eingedeckten Diatomee ist mit dem 60er Objektiv entstanden. Diesmal habe ich auf die Blautönung verzichtet.
Gruss
Michael
Hallo Michael
Du brauchst doch gar keinen DIC. Dieses Bild einer Arachnodiscus finde ich ganz große Klasse. Beim Hineinzoomen tauchen immer mehr Einzelheiten auf. 8) Noch eine Frage zu den 5 Einzelbildern. Meinst du einen Stack mit 5 Bildern oder anders?
Gruß von Siegfried
Hallo Siegfried,
Ein DIC, wäre schon was...
Mit dem 60er Objektiv und der Kamera erfasse ich nur 1/4 der Diatomee. Ich habe somit jedes viertel Kreissegment mit jeweils 30 Aufnahmen gestackt. Zusätzlich noch die Mitte der Schale. Am Schluss habe ich somit 5 Bilder mit jeweils einem 1/4 Kreissegment plus Mitte, die hinterher zusammen gesetzt wurden.
Gruss
Michael
OK, danke für deine Antwort.
Hier nochmal die Mitte der Discus.
Rus-Arachno-60x-Mitte-1600px.jpg
Und weil es ein trüber Tag ist, bring ich "etwas" Farbe rein.
Arachno-Falschfarbe-1600px.jpg
LG
Michael
Hallo,
Diese Diatomee, habe ich gestern finden können. Im Wasser etwas unscheinbar keine Struktur erkennbar nur die 7 Löcher am Rand. Es wirkt etwa so wie eine Kontaktlinse.
Im trockenem Zustand erkennt man erst die Oberfläche.
Wenn ich nach dem Schmidt Atlas gehe dürfte es eine "Glyphodiscus scintillans" B1, T80, 7+8 sein.
Hier die beiden Ansichten:
Glyphodiscus.jpg
und einmal von oben als Anaglyphenbild:
Glyphodiscus-3D-1600px.jpg
Gruss
Michael
Hallo,
Für alle die es vielleicht interessiert:
Hier ein Bild von dem Verbindungsstück zweier Keratophora nitida. Diesmal aus dem angefertigtem Präparat.
Kera-100x-Vrbg-800px.jpg
LG
Michael
Lieber Michael,
Du läufst zu Hochtouren auf! Deine letzten Bilder sind phantastisch, die colorierte Arachnodiscus der Wagnsinn.
Ich staune und hoffe, dass dieser Thread niemals enden möge.
Hallo Michael,
der helle Wahnsinn!!
Hier ein schneller Screenshot zum Vergleich aus einem paper mit REM Aufnahmen.
Deine Aufnahmen spielen wirklich in einer eigenen Liga!
Lg
AnneIMG_4874.jpeg
Hallo zusammen,
Danke für die Rückmeldungen.
@ Jürgen:
Die Arachnodiscus habe ich nicht von Hand eingefärbt. Es sind farblich überlagerte Solarisationsbilder.
@ Cidrin:
Wenn mir die Photonen nicht ausgehen, gibts weitere Bilder ;)
@ Anne:
Danke für die Bilder zu Vergleich. Ich versuche immer soviel wie möglich ins Bild zu bekommen.
Einmal im trockenem und einmal wenn es präpariert ist.
Stelle aber nicht immer aller Bilder ein. Das wird zuviel, weil es letztendlich ein und das selbe
Objekt ist. Für den Leser vielleicht langweilig.
Gruss
Michael
Hallo Diatomisten,
ich konnte in den letzten Tagen die folgenden Diatomeen und Silicoflagellaten aus Streupräparaten von Anne fotografieren.
Herzliche Grüße
Päule
...die sollte ich wohl auch fotografieren. Anne hatte sie mir markiert ;)
Ich kann mir nicht erklären, wie das Kreuz in die Diatomee kekommen ist....
...und noch ein paar Aufnahmen:
Bei den letzten drei bin ich mit der Bestimmung nicht weitergekommen. Vielleicht hat jemand eine Idee?
Viele Grüße
Päule
Hallo Päule,
tja so ein Kreuz ist schon einzigartig.
Für die letzten beiden Diatomeen schau doch mal auf Seite 2 dieses Fadens. Ich freue mich sehr über die Bilder von Dir!
lG
Anne
Hallo Päule,
Das sind schöne Bilder von den kleinen Formen in der Probe. Wie sind die Farben da rein gekommen?
Ich nehme an das es keine Reinbergbeleuchtung ist sondern eher invertierte Bilder.
Liege ich da richtig?
Gruss
Michael
Hallo Michael,
nur das erste Bild ist invertiert. Die anderen haben sich so aus dem DIC ergeben :D
Herzliche Grüße
Päule
Hallo, zur Zeit durchforste ich Streupräparate von Anne und habe heute die folgenden gefunden:
Viele Grüße
Päule
Hallo zusammen,
Ich habe hier ein kleines Präparat mit den Formen aus dem Material gelegt. Aber ich bin nicht ganz
zufrieden damit, da sich in einigen Diatomeen Luft befindet. Diese lies sich durch mehrmaliges anströmen
mit reinem Xylol (Toluol habe ich nicht) nicht austreiben. Ich denke das die Ursache der Klebegrund
ist. Den Debes Kleber hatte ich schon 1 Jahr nicht mehr in Gebrauch, war wohl zu dick.
Aus dem Grund werde ich ein neues legen, diesmal aber mit dem "wet medium", auch hier werde ich
mal Darax als Medium probieren.
Gruss
Michael
Hallo,
hier meine neuesten Fotos von Annes Irbit-Proben:
Viele Grüße
Päule
Aulacodiscus sp from Irbit, Russia.
Dear Bill,
a wonderful deposit!
Thanks for sharing your great images.
anne