Mikro-Forum

Hallo Mikrofreunde

Hab mal die Wacker 3A Färbung probiert, die ich bei Klaus Hermann ( auch hier in diesem Forum ) gekauft habe.
Die Ergebnisse sind vielversprechend und laden zu weiteren Experimenten ein.
Als Objekt versuchte ich mich an der Haselnuss (Corylus avellana), Stamm quer, geschnitten am Schlittenmikrotom
ungefähr 25 Mikrometer.
Fixiert wurde das Stammstück in AFE.
Die Aufnahme ist ein Stitch aus 105 Bildern, erstellt am Motic BA310 mit dem Planachromaten 10/0.25:
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/52930_50152377.jpg)

Hier eine Detailaufnahme aus der Rindenschicht - ein Stitch aus 12 Bildern, wobei die Einzelbilder ein Stack aus jeweils 3 Einzelaufnahmen sind:
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/52930_42981544.jpg)
Aufnahme am Motic BA310 mit dem Planachromaten 100/1.25, leider hat die Detailschärfe durch das Stacken etwas gelitten.

In der Rindenschicht fällt sofort ein sklerenchymatischer Ring auf.
Interessant sind die Zellen in diesem Ring, der aus zwei Zelltypen bestehen dürfte - der eine Typ färbt sich rot an, der andere
ist gelb angefärbt und zeigt wunderbare Tüpfelkanäle, über die Verbindung zu den anderen Zellen hergestellt wird:
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/52930_17412842.jpg)
Ich habe ein animiertes GIF erstellt mit gimp http://www.gimp.org/, damit der Verlauf der Tüpfelkanäle besser zu sehen ist.
Die Qualität der Fotos leidet da natürlich, da GIF nur 255 Farbabstufungen kann.
Die Einzelbilder wurden mit einem 2 Mikrometer Unterschied in der Schärfentiefe erstellt.

Die Originalbilder sind dort erhältlich: http://picasaweb.google.com/linuxtrainer/MikrofotosBotanik?feat=directlink
und sind von der Lizenz auch vollkommen frei (daher schreibe ich auch keinen (c) Hinweis hinein!).

mit freundlichen Mikrogrüßen
Leopold

Ein sehr schöner Schnitt! Und besonders gut aufbereitet.

Eine Frage habe ich jedoch: Wieso sind bei nur einem Fünftel des Querschnittes die beiden Jahresring blau gefärbt? Und wieso färben nur diese beiden Ringe und nicht die anderen?

Danke. FG

Rodi

Hallo Lepold,

wie immer ein bewundernswertes Ergebnis Deiner Präparier- und Fotokunst - da verzeih ich Dir auch gerne das fehlende r in meinem Namen  ;)

Zu Roderichs Frage kann ich nur vorsichtig vermuten: ein klein wenig Differenzierung mit 70% Ethanol hätte das an der falschen Stelle sitzende Blau ausgezogen. Ich hattte sowas auch schon.

Zitat von: Klaus Herrmann in Dezember 12, 2010, 13:38:36 NACHMITTAGS

Zu Roderichs Frage kann ich nur vorsichtig vermuten: ein klein wenig Differenzierung mit 70% Ethanol hätte das an der falschen Stelle sitzende Blau ausgezogen. Ich hattte sowas auch schon.

Hallo Klaus

Da ist kein Blau an der falschen Stelle - ich habe die Schnitte auch mit Etzold Grün von Klaus Herrmann gefärbt:
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/52978_12537225.jpg)
und auch hier ist dieser Bereich grün eingefärbt.
Ich denke da hat es eine Wachstumstörung gegeben - was auch immer der Grund war - die Pflanze hat hier die Zellwände mit einer dicken
Schicht Zellulosematerial verstärkt, ohne offensichtlich Lignin einzulagern.

mit lieben Mikrogrüßen
Leopold

Hallo Leopold

Zitatich habe die Schnitte auch mit Etzold Grün von Klaus Herrmann gefärbt

damit hast Du erst mal alles, aber auch wirklich alles richtig gemacht! :D

Aber die "Wachstumsstörung" in frühem Stadium ist schon seltsam! Du hast doch sicher noch ein Stückerl Zweigel?

Könntest Du bitterschön der Wissenschaft und mir zuliebe vielleicht noch einen Versuch machen? Musst ja auch - entgegen Deinen Prinzipien zur Perfektion keinen Stitch von 200 Bildern machen!

Hallo Leopold

Super Bilder, ich frage mich nur warum so viele Schichten bei der Schnittdicke noetig waren und vor allem wie Du die dann machst. Verwendest Du einen Schittmotor zu Verstellung des Stages?

:-)

Gerhard

Lieber Leopold,

wie immer ein sehr schönes Präparat und tolle Aufnahmen! Nur bei den Detailaufnahmen zu den Sklerenchymzellen mit Tüpfeln zeigen sich - wohl durch das Nachschärfen - einige Artefakte.


Lieber Gerhard,

das sind keine z-Stapel sondern Stitches: das Gesamtbild entsteht als Mosaik aus vielen Teilbildern in X-Y-Richtung.

Herzliche Grüße
Jörg

Danke für die Blumen

Zitat von: Fahrenheit in Dezember 13, 2010, 08:32:41 VORMITTAG
wie immer ein sehr schönes Präparat und tolle Aufnahmen! Nur bei den Detailaufnahmen zu den Sklerenchymzellen mit Tüpfeln zeigen sich - wohl durch das Nachschärfen - einige Artefakte.

Hallo Jörg
Wie gesagt das GIF hat nur 255 Farbabstufungen und auch beim Verkleinern auf 800px hat es dann einen heftigen Qualitätsverlust gegeben!
(vielleicht hätte ich zuerst die Einzelaufnahmen verkleinern sollen und dann erst das GIF erzeugen - was da besser rüberkommt muss ich noch
testen).

@rawfoto
Ich verwende autostich um die Bilder (die sich überlappen müssen) zusammen zu legen (eigentlich wird anhand der Bilddaten ein komplett
neues Bild berechnet) - funktioniert eigentlich mit jeder Panoramasoftware (autopano, hugin, ...)
Beim Rindendetailphoto hab ich 12 überlappende Abschnitte fotografiert, wobei von jedem Bereich Einzelfotos aus 3 Schärfeebenen
gemacht wurden - von diesen 3 Einzelphotos habe ich mit picolay einen Stack gemacht und diese 12 gestackten Fotos mit
der Panoramasoftware zusammengesetzt (gesticht).
Den Weitertransport des Präparats habe ich manuell gemacht, auch die Fokusierung auf die 3 Schärfeebenen. Denkbar wäre es dies alles zu
automatisieren - und ich denke dies wird auch die Zukunft sein im Mikroskopisch-Klinischen Bereich d.h. im Labor wird
von der Gewebeprobe ein Präparat erstellt, von diesem Präparat erstellt ein Mikroskop ein hochauflösendes Foto (Autofokus, automatische
Weiterbewegung des Präparats, stitchen der Einzelphotos, ...). Dieses hochauflösende Foto wird zum Arzt geschickt, der es am Computer
betrachtet und eine Diagnose erstellt.

@Klaus Herrmann

ZitatKönntest Du bitterschön der Wissenschaft und mir zuliebe vielleicht noch einen Versuch machen? Musst ja auch - entgegen Deinen Prinzipien zur Perfektion keinen Stitch von 200 Bildern machen!

Ich spiele den Ball einfach an Fahrenheit (Jörg) weiter - ich habe ihm alle mein noch verbliebenen Corylusschnitte geschickt - will mal sehen
was bei ihm da rauskommt - da wird dieser Bereich auch sicherlich wieder eine typische Zellulosefärbung zeigen.
Ich plane demnächst wieder Corylus zu schneiden (Stämmchen habe ich natürlcih noch), da stehen aber die radial/tangential Schnitte auf
der Tagesordnung - werde aber natürlich hier wieder Ergebnisse zeigen.

herzliche Mikrogrüße
Leopold

Lieber Leopold,

sorry, ein gif mit nur 256 Farbstufen, das hatte ich glatt überlesen.

Ich würde vermuten, dass die Ergebnisse tatsächlich besser auffallen, wenn Du die Einzelbilder zunächst verkleinerst und dann einzeln umwandelst.
Durch die Verringerung des Farbraums tritt ja auch ein gewisser "Schärfungseffekt" ein. Von daher sollten die besten Ergebnisse entstehen, wenn Du schon beim Verkleinern möglichst wenig nachschärfst.

Herzliche Grüße
Jörg

Danke Leopold

Stitching und stacking habe ich bisher immer nur getrennt verwendet, beides zu kombinieren hat bisher bei mir nur im Gedanken stattgefunden ...

Schoen Deine Ergebnisse zu sehen, da hat man den Beweis was moeglich ist! Ich habe bisher vermutet durch die Verstellung am Tisch in drei Ebenen nicht die noetige Genauigkeit zu erreichen. Mit welchem Objektiv gehst Du da ans Werk?

:-)

Gerhard

Hallo Gerhard

Zitat von: Rawfoto in Dezember 13, 2010, 22:03:07 NACHMITTAGS
Mit welchem Objektiv gehst Du da ans Werk?

Die Aufnahmen habe ich mit dem 100/1.25 Planachromat am Motic BA310 erstellt.
Als Kamera verwende ich zur Zeit eine DCM310 USB Okularkamera (3Megapx) , von der ich die Optik abgeschraubt habe
und die man dann auch als C-Mountkamera verwenden kann. Diese betreibe ich am 0.5 C-Mountadapter von Motic.

Dies ist auch mein erstes Stitching-Stacking Experiment und es läd zu weiteren Experimenten ein - wann programmiert ein Fähiger mal
eine Software die all diese Features in einem Programm vereint??? BITTE!

mit herzlichen Mikrogrüßen
Leopold

Lieber Leopold

Danke fuer die Rueckmeldung, unglaublich, mit dem 100x ...

Wie viele Pixel bekommst denn als Ergebnis in der x und y Achse?

:-)

Gerhard

Hallo Gerhard

Zitat von: Rawfoto in Dezember 13, 2010, 23:08:11 NACHMITTAGS

Danke fuer die Rueckmeldung, unglaublich, mit dem 100x ...

Wie viele Pixel bekommst denn als Ergebnis in der x und y Achse?

Um da keine falschen Vorstellungen aufkommen zu lassen: das Übersichtsbild habe ich NICHT mit dem 100/1.25 gemacht sondern
mit dem 10/0.25. Waren dann aber auch noch 105 Bilder, die da zum Gesamtbild verrechnet wurden. Gestackt wurde da nicht, ist mir
bei 105 Bilder doch etwas zu kompliziert.
Das Endergebnis hatte 9861 x 9724 Pixel und ist als jpg 60 MegaByte groß.
Ein paarmal habe ich so ein Übersichtsbild auch mit dem 20/0.4 Objektiv erstellt, da kommt man aber schnell auf über 300 Einzelbilder
und das Neuberechnen am Computer und die Bildbearbeitung werden zu Qual wenn der Rechenknecht nur 3G RAM hat.

Das Detailbild der Rinde habe ich mit dem 100/1.25 erstellt, 12 Bereiche (also 6 Abschnitte, 2 Reihen) fotographiert wobei ich von jedem
Bereich 6 Einzelbilder aus verschiedenen Schärfeebenen erstellt haben.
Zuerst habe ich die Einzelbilder gestackt, wobei ich zum Stacken mich nur für 3 Schärfeebenen entschieden habe, die restlichen 3 Bilder habe
ich verworfen (das Endergebnis war mit mehr als 3 Schärfeebenen für mich nicht akzeptabel).
Alle 6 Schärfeebenen habe ich bei den 12 Abschnitten immer auf der selben Ebene erstellt - dazu habe ich die Mikrometerskala am
Feintriebstellrad verwendet. Mechanisch gibt es da am Motic wirklich nichts zu bemängeln - der Kreuztisch ist fein zu führen ohne Spiel und
auch der Feintrieb ist wirklich exakt.

Die Fotos zum animated GIF habe ich wieder mit dem Objektiv 100/1.25 aufgenommen - das GIF selbt mit der Software GIMP erstellt, mit einer
Verzögerung von 500ms zwischen den einzelnen Fotos.
 

mit herzlichen Mikrogrüßen
Leopold

Hallo Leopold

Danke fuer die Rueckmeldung, ich werde da in den Weihnachtstagen auch einen Versuch starten. Ich bin schon sehr gespannt wie das bei meinen Mikroskopen mit der exakten Positionierung funktioniert (oli BHS) ...

:-)

Gerhard

Hallo Leute,

jetzt habt Ihr gesticht und gestacked aber das wissenschaftliche Problem der blauen Flecken auf der falschen Stelle ist versackt.
Und das wäre doch schon was lohnendes!

Lieber Klaus,

die Schnitte sind vorgestern gut bei mir angekommen (Lieber Leopold, auch hier noch mal herzlichen Dank!). Vor Weihnachten wird das wahrscheinlich nichts mehr, aber ich werde mich mit eigenen Färbeversuchen zurückmelden.

Herzliche Grüße
Jörg

Lieber Klaus, lieber Leopold,

die Haselnussschnitte liegen nach der Färbung gerade im letzten Wasserbad. So viel vorweg: ich kann die Ergebnisse von Leopolds Färbung bestätigen.
Mehr, wenn die Präparate fotogen genug für einige Aufnahmen sind - aber ich glaube, hier sind die Pflanzenanatomie-Experten gefragt. Es muss eine Erklärung außerhalb der Präparationsprozesse geben.

Herzliche Grüße
Jörg 

Lieber Leopold,

warum auch immer habe ich Deinen Beitrag erst jetzt gesehen, tut mir leid :-[

Die Darstellung der Tüpfelkanäle ist ja sensationell, Dankeschön!

Und ich durfte zwischenzeitlich auch live Deine Schnitte begucken, auch dafür sehr herzlichen Dank!!!

Viele Grüße, frohe Weihnachten und guten Rutsch,
Mila

Liebe Pflanzenfreunde,

wie versprochen, hier nun meine Aufnahmen von Leopolds Schnitten. Diese habe ich nach Wacker W3A gefärbt: Eckhardschen "Eintopfmethode" in einem Uhrglas; Acridinrot 1% in Ethanol 50% für ca. 8 Minuten; Acriflavin 1% in Aqua dest. für ca. 20 Sekunden, Astrablau 1% in Aqua dest. mit einem Tropfen Acriflavin für ca. 30 Sekunden. Eingedeckt habe ich über Isopropanol in Euparal.

Bild 1: zunächst ein Überblick bei 50-facher Vergrößerung, Stapel aus 15 Bildern
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/54077_43961406.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Wie man sieht, zeigen sich die gleichen beiden charakteristischen Streifen wie in Leopolds Präparaten.

Bild 2a/b: da müssen wir wohl mal etwas genauer hin sehen, Bild 2b mit Beschriftung (Vergrößerung 200x, Stapel aus 8 Bildern)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/54077_57587216.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/54077_12265641.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Von innen nach außen:
MP : Markparenchym
Am : mehrlagiger Ring am Rande des Markparenchyms mit Parenchymzellen voller Amyloplasten
       (hier vermute ich, dass der Zweig nach dem Abfallen der Blätter geschnitten wurde.
       Die Amyloplasten liefern die erste Energie für den nächsten Austrieb im Frühjahr)
PXL : Primäres Xylem
T    : Tracheen
MS  : Markstrahl
X    : "Falschfarbenzellen"  :D
Es ist schon zu erkennen, dass die X-Zellen für Xylemzellen untypisch verdickte Zellwände haben, die nicht lignifiziert sind, so wie es Leopold bereits beschrieben hat.

Bild 3a/b: da geht noch was! 3a unsere "X-Zellen", 3b normales Xylemgewebe aus dem gleichen Schnitt; Vergrößerung 400x, Stapel aus jeweils 5 Bildern
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/54077_33129233.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/54077_16121273.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Nun ist der Unterschied ganz deutlich zu erkennen, es handelt sich nicht um Farbansammlungen in den Zellen.

Bild 4a/b: Auf die Cellulose geschaut! 4a die "X-Zellen", 4b normales Xylemgewebe aus dem gleichen Schnitt; Vergrößerung 400x (größere Kameraobjektiv-Brennweite als bei den Bildern 3), Stapel aus jeweils 5 Bildern
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/54077_56992443.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/54077_54988824.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Deutlich ist zu sehen, dass die Zellwände der Zellen in Bild 4a nach innen verdickt sind. Auf eine vergleichsweise dünne, lignifizierte Wandschicht (rot im Bild) folgt die Verdickung aus Cellulose (blaugrün). Es lässt sich sogar eine Schichtung erahnen.

Bild 5: Bild 4a mit Maßstab, Vergrößerung 400x, Stapel aus 5 Bildern
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/54077_39949305.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Die Trachee hat einen maximalen Innendurchmesser von ca. 45 µm. Die Cellulose-Wände sind zwischen 2,5 und 4 µm dick. Nur die Xylemzellen weisen die verstärkten Zellwände auf, die dazwischen liegenden Zellen der Markstrahlen und die Tracheen sind nicht betroffen.

Da die Celluloseeinlagerungen nur auf ca. einem Viertel des Sprossquerschnitts auftauchen, nehme ich an, dass sie eine Reaktion der Pflanze auf eine länger andauernde, einseitige Belastung des Zweiges darstellen und somit der Stabilisierung dienen. Liege ich mit meiner Interpretation richtig, oder gibt es andere Erklärungen?

Noch zwei Detailbilder aus dem Schnitt:

Bild 6: Primäres Xylem und Markparenchymzellen mit Amyloplasten, Vergrößerung 400x, Stapel aus 8 Bildern
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/54077_27308782.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)

Bild 7: eine große Steinzelle mit Tüpfelkanälen im Sklerenchymring außerhalb des Phloems, Vergrößerung 400x, Stapel aus 3 Bildern
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/54077_45918257.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Neben normalen sklerenchymatischen Zellen (kleiner Zelltyp mit satt roten Zellwänden) finden sich immer wieder Nester mit großen Steinzellen, die gelb-orange eingefärbt sind. Die große Steinzelle in der Bildmitte hat eine Länge von ca. 53 µm, ihre Tüpfelkanäle sind 5 bis 7 µm lang.

Herzliche Grüße
Jörg

Lieber Jörg,

das ist Oberklasse!

Und Leopold ist voll rehabilitiert! Dass Zug- (oder ist es Druckholz?) eine so abweichende chemische Zusammensetzung hat.

Wäre wirklich eigenartig, wenn das noch nicht untersucht ist.

Deine Detailbilder sind lehrbuchreif!

Jetzt brauchen wir nur noch jemanden, der uns das erklärt!

Lieber Klaus,

frohe Weihnachten und vielen Dank für die Blumen!  :)

Gestern Abend war es mir zu spät, aber eben habe ich mal nach Reaktionsholz bzw. Druckholz (Nadelbäume) und Zugholz (Laubbäume) gegoogled und interessante Links gefunden, von denen ich hier eine kleine Auswahl anhänge:

Die FH Eberswalde hat eine Vorlesung zur Holzkunde im Netz (http://www6.fh-eberswalde.de/forst/forstnutzung/ifem/homepage/seiten/vorlesung/2/2.html), dort heißt es unter dem Punkt 2.4.2.2 Reaktionsholz:

Zitat2.4.2.2.2        Zugholz

Ähnlich dem Druckholz von Nadelhölzern bildet sich Zugholz bei Laubhölzern bei besonderen Belastungen aus, insbesondere an schiefstehenden Bäumen. Zugholz sieht weißlich, glasig ohne erkennbaren Jahrringaufbau aus. Es hat einem höheren Cellulosegehalt. Hinsichtlich dem Verhalten beim Quellen und Schwinden ist es ähnlich negativ zu beurteilen wie Druckholz. Es ist vielfach oberhalb von Astansatzstellen zu beobachten. Zugholz ist ohne Hilfsmittel an den Querschnittsflächen schwerer erkennbar. Durch Anfärben mit Cellulosereagenzien lässt sich Zugholz an Schnittflächen wegen seines höheren Cellulosegehaltes gut erkennen.

Hier wird explizit der höhere Cellulosegehalt angesprochen, was die Schnittfärbungen ja auch schön zeigen.

Du hast natürlich recht: das Thema wird erforscht, zumal es wirtschaftliche Bedeutung für die holzverarbeitende Industrie hat: die forest commission in Großbritannien unterhält z.B. eine Arbeitsgruppe  Cell wall macromolecules and reaction wood (CEMARE)  (http://www.forestresearch.gov.uk/fr/INFD-6FMCB3)

Und bei der Universität für Bodenkultur in Wien gibt es noch ein kleines Bild mit Querschnitten (http://www.map.boku.ac.at/7419.html).

Zu guter Letzt noch der Hinweis auf den entsprechenden Artikel zu Holzfehlern in der Wikipedia (http://de.wikipedia.org/wiki/Holzfehler), dort heißt es zu Reaktionsholz:

ZitatReaktionsholz (Druckholz / Zugholz) [Bearbeiten]

Wird ein Baum durch Hanglage, durch exponierte Windlage oder durch den Druck von Schneemassen einseitig belastet, bildet sich Reaktionsholz und ein exzentrischer Wuchs. Nadelhölzer bilden talwärts Druckholz; auf der belasteten Seite teilen sich die Kambiumzellen schneller und es entstehen dickere Zellwände. An der rötlichen Färbung erkennt man, dass der Ligninanteil hier höher ist; das Holz ist hart, spröde und schwindet stark. Laubhölzer reagieren dagegen hangwärts mit der Bildung von Zugholz; der Zelluloseanteil ist hier höher, die Zellwände sind mikroskopisch gewellt, man erkennt es an seiner hellen Farbe. Es ist rau und schwindet ebenfalls stark. Wird Reaktionsholz verarbeitet, besteht besonders an der Kreissägemaschine durch Klemmen hohe Unfallgefahr.

Ich denke, damit können wir das Rätsel des "Was?" als gelöst betrachten. Aber "Wie?" merkt die Pflanze die Belastung und wie wird das Wachstum gesteuert?

Lieber Leopold,

auch Dir eine frohe Weihnacht und noch mal vielen Dank für diese sehr interessanten Schnitte!

Herzliche Grüße
Jörg

Hallo Jörg

Herzlichen Dank für deine supertollen Aufnahmen und ich habe auch wieder was dazugelernt!
Die Probe habe ich am Wienfluss geerntet (Fluss ist vielleicht etwas übertrieben), doch
der Ast ist in Richtung Fluss gewachsen und war somit nicht von benachbarten Pflanzen geschützt
und war da natürlich wesentlich stärker Winddruck und Schneedruck ausgesetzt.
Ich habe dort noch von anderen Pflanzen Proben gesammelt und die zeigen fallweise ähnliche
Anpassungen!.

mit herzlichen Mikrogrüßen
Leopold

Lieber Jörg,

vielen Dank für diese Fortbildung! :)

Die Fotos zusammen mit den Erläuterungen: wirklich klasse.

Herzliche Weihnachtsgrüße
Mila

Liebe Mila, lieber Leopold,

Ihr habt uneingeschränkt recht! Jörg macht mich überflüssig! Jedenfalls eine tolle Recherche!

Schöne Weihnachten für Euch Alle,

Detlef

Liebe Freunde,

frohe Weihnacht und vielen Dank für Euer Lob!

Lieber Leopold,

ja, das könnte die Erklärung sein!

Lieber Detlef,

nein, ganz sicher nicht!  :)

(@ all)
Offen bleibt ja auch noch die Frage nach dem "Wirkmechanismus": mit welchen Sensoren erkennt die Pflanze die einseitige Belastung und wie regen diese wiederum die Cellulosebildung in oder an den Zellwänden an?

Herzliche Grüße
Jörg

Hallo Joerg

Die Bilder haben eine unglaubliche Qualität, hast Du nicht noch vor kurzem Probleme mit Deiner Fotoausrüstung am Mikroskop vermeldet ...

@ alle Beteiligten

Ich finde den Beitrag spitze :-)

Gerhard

Danke an alle Beteiligten!
Dieser Thread war für mich noch viel lehrreicher als die von mir sowieso geschätzten Dokumentationen Eurer botanischen Schnitte.
Euer Nachfragen, recherchieren und die wissenschaftliche Neugier befriedigen, wunderbar!

Herzlich

Martin

Ich habe da noch was bei Esau dazu gefunden:
http://books.google.at/books?id=KNvjhzboJ2cC&pg=PA275&lpg=PA275&dq=druckholz+zugholz&source=bl&ots=ngHfZk2jSn&sig=W-gtDZSWAU90L_TzScGESir6Cqo&hl=de&ei=gGMWTcvlNs2TjAeqyeD1BQ&sa=X&oi=book_result&ct=result&resnum=1&ved=0CBYQ6AEwADgK#v=onepage&q=druckholz%20zugholz&f=false
und hier noch ein paar interessante Links die sich auch mit Reaktionsholz beschäftigen:
http://www6.fh-eberswalde.de/hote/lehrgebiete/Forstnutzung/Vorlesung2.2.ho.htm
http://www6.fh-eberswalde.de/forst/forstnutzung/ifem/homepage/dokumente/vorlesung/pdf/2.3.3.pdf


mit herzlichen Mikrogrüßen
Leopold

Lieber Gerhard,

mh, man ist halt nie zufrieden. Die Aufnahmen sind in der nativen Auflösung der Kamera (2272*1704 Punkte) bei weitem nicht so schön scharf. Das Herunterrechnen auf 800*600 Punkte mit leichtem Nachschärfen bringt einen erstaunlichen Qualitätsgewinn.

Lieber Martin,

nichts zu danken: genau das macht das Forum aus.  :)

Lieber Leopold,

danke für die interessanten Links! In der Richtung habe ich auch noch einen etwas älteren Aufsatz mit einem netten Experiment gefunden:

In seinem Aufsatz "Bildung von Reaktionsholz durch Zentrifugalbeschleunigung (http://www.springerlink.com/content/342734v14030767r/)" von 1967 schreibt G. Casperson:

ZitatDamit ist erwiesen, dass die Zentrifugalkraft gleichartig wie die Schwerkraft einwirkt und die Massenbeschleunigung als Ursache für die Reaktionsholzbildung anzusehen ist.

Dazu hat er im Experiment Kastaniensprösslinge auf einer Art Zentrifuge in wechselnder Dauer und Intensität "geschleudert" und die Ergebnisse anhand mikroskopischer Schnitte bewertet.
Interessant ist, dass die Krafteinwirkung mindestens 24 h andauern muss. Weiterhin findet die Ausdifferenzierung nach den Untersuchungen von Casperson bereits in den Cabiumzellen statt, bereits ausgebildete Xylemzellen werden damit nicht in irgendeiner Weise umgewandelt.

Raven/Evert/Eichhorn und Strasburger gehen auch nicht weiter, als der Esau.

Damit wäre nun der Auslöser bekannt. Der Wirkmechanismus ist jedoch noch offen. Sorry, auch nach intensiverer Suche konnte ich dazu nichts finden.

Herzliche Grüße
Jörg