Liebe Pflanzenfreunde,
der Kuchenbaum ist in Japan beheimatet, oftmals ein mehrstämmiger Baum von 12-15 m Höhe. Die Blüten erscheinen vor dem Laubaustrieb.
Den Namen verdankt der Kuchenbaum seinem Duft, genauer gesagt, dem Geruch des herabgefallenen Herbstlaubs: Besonders an trüben und feuchten Herbsttagen verströmen die Blätter im Garten einen intensiven Duft von Zuckerwatte und frisch gebackenem Kuchen.
Der Kuchenbaum (Cercidiphyllum japonicum), auch Katsurabaum genannt, ist im Herbst eine der Attraktionen in vielen unserer Botanischen Gärten.
Aufgrund des frühen Austriebs leicht spätfrostgefährdet.
Bild 01 (Cercidiphyllum japonicum)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/75985_12763710.jpg)
Weiterhin bemerkenswert: Kurztriebe mit einem Blatt, auch aus dem Stamm.
Systematik:
Ordnung: Steinbrechartige (Saxifragales)
Familie: Kuchenbaumgewächse (Cercidiphyllaceae)
Gattung: Kuchenbäume (Cercidiphyllum)
Art: Japanischer Kuchenbaum
Wissenschaftlicher Name: Cercidiphyllum japonicum
Alternative Bezeichnungen: Judasblatt: Katsurabaum, Lebkuchenbaum, Kuchenbaum
Spross, Querschnitte 35 µm
Arbeitsanleitung:
Original Färberezept siehe Seite von Herrn Armin Eisner http://www.aeisner.de/
W-3A-Färbung nach Wacker (Acridinrot-Acriflavin-Astrablau) modifiziert
Arbeitsablauf :
Quer-und Längsschnitte
Reichert - Jung Schlittenmikrotom Hn 40 – die Schnittstärke beträgt 30 µm.
Probe lag in AFE – Gemisch
1. Fixiergemisch auswaschen in 70 % Ethanol 5 Minuten
2. Alkoholreihe bis zum 30%igen Ethanol
3. Wasser entmin. 3x wechseln je 1 Minute
4. Vorfärbung Acridinrotlösung 8 Min.
5. 1x auswaschen mit Aqua dest. .
6. Acriflavinlösung (differenzieren bis gerade keine Farbwolken mehr abgehen - Lupenkontrolle) 12 Sekunden.
7. 2 x auswaschen mit Aqua dest..
8. Nachfärbung Astrablaulösung 2 Minute.
Bei der Nachfärbung mit Astrablau eine Mischung aus Astrablau und Acriflavin im Verhältnis 4 : 1 verwendet (gelb + blau = grün).
9. Auswaschen mit Aqua dest. bis keine Farbstoffreste auf dem Objektträger verbleiben
10. Entwässern mit 2x gewechseltem Isopropylalkohol ( 99,9 % )
11. Als letzte Stufe vor dem Eindecken Xylol einsetzen
12. Einschluss in Entellan
Ergebnis :
Zellwände blaugrün bis grün, verholzte Zellwände leuchtend rot. Zellwände der äußeren Hypodermis orangerot, Cuticula gelb. Zellwände der innenliegenden Hypodermis tiefrot, Suberin hellrosa.
Fotos erstellt mit Nikon D5000.
Bild 02 Schnittstelle, (Cercidiphyllum japonicum)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/75985_53550083.jpg)
Bild 03 Mit Styrodur habe ich den Spross im Probenhalter eingespannt.
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/75985_48069761.jpg)
Die korkige Rinde ist flach und unregelmäßig gefurcht.
Bild 04 Spross, Übersicht, (Cercidiphyllum japonicum)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/75985_24703162.jpg)
Die Übersichtsaufnahme wurde mit ,,MagniFlash" erstellt
Bild 05 Spross, Vergrößerung aus der Übersicht mit Beschriftung, (Cercidiphyllum japonicum)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/75985_6196694.jpg)
EP = Epidermis, PE = Periderm, RP = Rindenparenchym, SK = Sklerenchymzylinder, PH = Phloem, K = Kambium, MA, p = parenchymatische Markstrahlzellen, MA, s = sekundäre Markstrahlzellen, XY = Xylem, T = Tracheen
Der Sklerenchymring wird mit zunehmendem Dickenwachstum durch die Bildung von Parenchymzellen unterbrochen, wodurch die ,,Inseln" entstehen.
Bild 06 Spross, Markzellen (Cercidiphyllum japonicum)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/75985_52737895.jpg)
Bild 07 Spross, Xylem mit Tracheen (Cercidiphyllum japonicum)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/75985_14770086.jpg)
Bild 08 Spross, Fluoreszenzaufnahme, (Cercidiphyllum japonicum)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/75985_1593780.jpg)
Fluoreszenzaufnahmen mit Anregungswellenlänge RoyalBlue mit 455 nm, 3 Watt LED - kein Pilotlicht
Bild 09 Spross, Lentizelle, (Cercidiphyllum japonicum)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/75985_65344985.jpg)
Die ,,Korkwarzen" ermöglichen dem äußeren Sprossgewebe den Gasaustausch. . Die Triebe sind rotbraun glänzend mit hellen Lentizellen.
Spross, Längsschnitt 30 µm
Bild 10 Spross auf einen Holzklotz geklebt (Cercidiphyllum japonicum)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/75985_61898694.jpg)
Bild 11 Spross, Übersicht, Längsschnitt (Cercidiphyllum japonicum)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/75985_54818518.jpg)
Die Übersichtsaufnahme wurde mit ,,MagniFlash" erstellt
Bild 12 Spross, Lentizelle im Längsschnitt (Cercidiphyllum japonicum)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/75985_32966727.jpg)Bild 13 Spross, Markstrahlzellen ( relativ dickwandig) (Cercidiphyllum japonicum)
Bild 13 Spross, Markstrahlzellen ( relativ dickwandig) (Cercidiphyllum japonicum)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/75985_9458565.jpg)
Blattstiel, sehr jung (Durchmesser: 1 mm) , Querschnitt 30 µm
Bild 14 Blattstiel, Schnittstelle (Cercidiphyllum japonicum)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/75985_52256863.jpg)
Der Blattstiel ist auffallend rot.
Bild 15 Blattstiel, Übersicht, (Cercidiphyllum japonicum)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/75985_62156623.jpg)
Die Übersichtsaufnahme wurde mit ,,MagniFlash" erstellt
Bild 16 Blattstiel, Vergrößerung, (Cercidiphyllum japonicum)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/75985_65393589.jpg)
Bild 17 Blattstiel, starke Vergrößerung (Cercidiphyllum japonicum)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/75985_63891483.jpg)
Bild 18 Blattstiel (Cercidiphyllum japonicum)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/75985_2305138.jpg)
Cuticula, Epidermis, Rindenparenchym, Sklerenchym
Bild 19 Blattstiel, Fluoreszenzaufnahme, (Cercidiphyllum japonicum)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/75985_27401810.jpg)
Fluoreszenzaufnahmen mit Anregungswellenlänge RoyalBlue mit 455 nm, 3 Watt LED - kein Pilotlicht
Literatur:
Bruno P. Kremer: Steinbachs grosser Pflanzenführer. Ulmer, Stuttgart 2005, ISBN 3-8001-4903-6.
Mit freundlichem Gruß
Hans-Jürgen