Liebe Pflanzenfreunde,
in der Winterzeit (war da was?) ist die Auswahl an Pflanzen für botanische Schnitte naturgemäß nicht so groß. Man muss sich auf die immergrünen Pflanzen beschränken. Da kam mir die Lavendelheide im Vorgarten gerade recht, zumal das ausgewählte Sprossstück eine Besonderheit aufweist, auf die ich nachher noch zu sprechen kommen möchte.
Die Formosa-Lavendelheide (Pieris formosa) ist eine von 7 Arten der Gattung Pieris und gehört somit in die Familie der Ericaceae (Erikagewächse). Die attraktive Pflanze ist heute in vielen Gärten zu finden. Das ursprüngliche Verbreitungsgebiet hingegen liegt im östlichen Himalaja, Nord-Myanmar und der Chinesischen Provinz Yunann. Die Pflanze bevorzugt einen sonnigen bis halbschattigen Standort auf steinigen bis lehmigen Böden und fühlt sich auch auf feuchten Substraten wohl.
Sie ist ein Strauch von kugelförmigem bis gestrecktem Wuchs und wird bis etwa 5 Meter hoch. Pieris formosa ist immergrün und zeigt im Frühjahr zunächst leuchtend rote, später auf der Oberseite dunkelgrüne, lanzettliche Blätter mit hell abgesetzter Mittelrippe und fein gezähntem Rand. Die Unterseite hingegen ist matt hellgrün mit diesmal dunkel hervorgehobener Äderung. Dabei sind die wechselständigen Blätter mehr oder weniger deutlich in Scheinwirteln angeordnet.
Bild 1: Blattwerk der Lavendelheide
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_40004744.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Bild 2a/b: Blattober- und Unterseite
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_29581803.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_4894407.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Die weißen, urnenförmigen Blüten hängen in Rispen zu typisch 20 bis 40 Einzelblüten. Die Blütezeit geht von Mai bis Juni. Die flachspaltigen Kapselfrüchte entwickeln sich im Sommer und enthalten relativ kleine Samen.
Bild 3: Blüten der Formosa-Lavendelheide
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_66452980.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Aufnahme von A.Barra, 2001, unter GLFD V1.2
Alle oberirdischen Pflanzenteile sind giftig. Der wichtigste Giftstoff ist der Diterpenester Acetylandromedol, welcher auf der Haut Jucken und Brennen hervorruft und nach Verzehr zu Übelkeit und Erbrechen, starken Darmkrämpfen und Durchfall führt. Entsprechend hohe Dosen können durch Atemlähmung auch letal sein.
Bild 4: auch bei der Lavendelheide darf eine Illustration nicht fehlen
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_40217652.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Aus Curtis's Botanical Magazine, London 1909, vol. 135 [= ser. 4, vol. 5]: Tab. 8283, von Mathilda Smith (Lith. J.N. Fitch.), gemeinfrei.
Wie immer kurz zur Präparation:
Geschnitten habe ich das Frischmaterial auf dem Handzylindermikrotom mit Leica Einmalklingen im SHK-Klingenhalter mit einer Schnittdicke von ca. 50 µm. Die Schnitte sind in AFE fixiert (Einwirkzeit ca. 20 Minuten).
Die anschließende Färbung erfolgte nach dem W3Asim II Verfahren von Rolf-Dieter Müller. Die Färbung ist auf der Webseite des MKB (http://www.mikroskopie-bonn.de/bibliothek/botanische_mikrotechnik/index.html#a754) ausführlich beschrieben und es kann auch ein Arbeitsplan (http://www.mikroskopie-bonn.de/downloads/index.html#a15) heruntergeladen werden.
Der anschließende Einschluss erfolgte - nach Entwässerung in reinem Isopropanol - in Euparal.
Nun zu den Präparaten:
Die neuen Sprosse der Lavendelheide sind zunächst grün, bekommen aber nach 2 bis 3 Jahren eine braune, streifige Rinde. Am Probenstück hatte dieser Prozess bereits eingesetzt, aber leicht asymmetrisch, so dass in einem Schnitt sowohl ein klassisches Rindenparenchym mit Epidermis und Cuticula, als auch das sich bildende Periderm unter den bereits abgestorbenen und schrumpfenden Schichten des alten Parenchyms beobachtet werden kann.
Bild 5: Sprossstück mit Schnittführung
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_38311024.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Der gezeigte Spross hat einen Durchmesser von etwa 4 mm.
Bild 6: Makroaufnahme eines gefärbten Schnittes zur Übersicht
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_27248120.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Im Viertel zwischen etwa 3 und 6 Uhr sticht das abgestorbene Gewebe (rot) ins Auge. Beim Rest folgt auf den dunklen Phloem-Ring ein klassisches Rindenparenchym. Zwischen 10:00 und 11:00 Uhr eine Knospe, die leider nach innen umgeschlagen ist.
Bild 7: ein wenig näher heran, Vergrößerung 50x, Stapel aus 12 Bildern
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_43431110.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Der Übergang zwischen den beiden unterschiedlichen Begrenzungsgeweben ist gut zu erkennen. Das sich bildende Periderm setzt sich noch ein Stück nach links unter das lebendige Rindenparenchym fort.
Nun zunächst einige Bilder von der "Rindenparenchym-Seite"
Bild 7: Aufnahme vom frisch geschnittenen, unfixierten Material, Vergrößerung 100x, Stapel aus 9 Bildern
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_35845050.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Bild 8a/b: Ein ähnlicher Ausschnitt nach der Färbung, Bild 8b mit Beschriftung. Vergrößerung 100x, Stapel aus 8 Bildern
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_60360926.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_58878883.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Beschriftung von innen nach außen:
T: Trachee
XL: Xylem
MS: Markstrahl
JRG: Jahresringgrenze, diese liegt recht nah beim Cambium, obwohl die Probe erst in der vergangenen Woche genommen wurde.
Vielleicht ein Tribut an den trockenen Herbst? Da es bei uns bisher recht mild und dann auch wieder feucht war, ist der
Spross dann über den Jahreswechsel wieder weiter gewachsen.
Ca: Cambium
Pl: Phloem
Skl1: Sklerenchymatisches Phloemparenchym
Skl2: durchbrochener Sklerenchymring im Rindenparenchym
RP: Rindenparenchym
Ep: Epidermis
Cu: Cuticula
Bild 9a/b: schauen wir uns die äußeren Gewebeschichten noch einmal etwas genauer an. Bild 9b mit Beschriftung; Vergrößerung 200x, Stapel aus 15 Bildern
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_65223969.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_56937050.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Beschriftung wie unter Bild 8, neu ist die Lakune (La) im Rindenparenchym. Schön sind auch die beiden unterschiedlich angefärbten Sklerenchyme Skl1 (sklerenchymatisches Phloemparenchym) und Skl2 (Reste des Sklerenchymrings im Rindenparenchym) zu erkennen.
Und nun die dunkle Seite der M... äh, Pieris ;D
Bild 10: wie schon bei der hellen Seite zunächst ein ungefärbter und noch unfixierter Schnitt. Vergrößerung 100x, Stapel aus 6 Bildern
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_52717686.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Bild 11 a/b: nun gefärbt, Bild 11b mit Beschriftung. Vergrößerung 100x, Stapel aus 7 Bildern
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_13941511.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_34731078.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Die Beschriftung von innen nach außen analog zu Bild 8b:
XL: Xylem
T: Trachee
MS: Markstrahl
JRG: Jahresringgrenze, diese liegt recht nah beim Cambium, obwohl die Probe erst in der vergangenen Woche genommen wurde.
Vielleicht ein Tribut an den trockenen Herbst? Da es bei uns bisher recht mild und dann auch wieder feucht war, ist der
Spross dann über den Jahreswechsel wieder weiter gewachsen.
Ca: Cambium
Pl: Phloem
Skl1: Sklerenchymatisches Phloemparenchym
Per: Periderm, das neue Abschlussgewebe bildet sich am Außenrand des Phloems und verdrängt das darüberliegende Rindenparenchym.
Dieses und die noch weiter außen liegende Epidermis werden von der Nährstoff- und Wasserversorgung abgeschnitten, was schön am
Übergang der Markstrahlen zu erkennen ist. Zusätzlich werden die Zellschichten vom raumgreifenden Periderm gequetscht und sterben
schließlich ab.
aSkl: Skl2, die Reste des Sklerenchymrings
aRP: abgestorbenes Rindenparenchym
aEp: abgestorbene Epidermis
Cu: Cuticula
Bild 12 a/b: auch hier schauen wir genauer hin. Bild 12b mit Beschriftung; Vergrößerung 200x, Stapel aus 12 Bildern
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_14688084.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_65340537.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Beschriftung analog zur Aufnahme 11b. Dabei fällt es mir schwer, die für mich recht homogen wirkenden Zellen des Periderms genauer nach Phellem, Phellogen und Phelloderm zu unterscheiden.
Sehr interessant ist auch der Übergang zwischen den beiden unterschiedlichen Begrenzungsgeweben, wo sich das Periderm noch ein gutes Stück unter dem lebenden Rindenparenchym fortsetzt und sogar nach Außen hin eine Begrenzung zwischen diesem und dem bereits abgestorbenen Rindenparenchym bildet.
Bild 13 a/b: der Übergang, Bild 13b mit Beschriftung. Vergrößerung 200x, Stapel aus 12 Bildern
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_61716326.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_47341430.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Die Beschriftung wieder analog zu 8b bzw. 11b. Die schwarzen Flecken ähneln stark den Herrmannschen Kellergeistern. Bei ihnen handelt es sich um Lufteinschlüsse innerhalb der betroffenen Zellen. Wieder ein Rätsel gelöst? ;)
Bild 14 a/b: der letzte Zipfel des Periderms, Bild 14b mit Beschriftung. Vergrößerung 400x, Stapel aus 11 Bildern
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_61950439.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_56940069.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Beschriftung wie oben. Ist hier vielleicht eine Unterscheidung nach Phellem, Phellogen und Phelloderm möglich?
Bild 15: das primäre Xylem soll auch nicht zu kurz kommen. Vergrößerung 400x, Stapel aus 6 Bildern
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_52841471.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Bild 16: und zum Abschluss noch ein kurzer Blick auf die Knospe. Vergrößerung 100x, Stapel aus 15 Bildern
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83255_19016687.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Vielen Dank fürs Anschauen, Anregung und Kritik sind wie immer willkommen.
Herzliche Grüße
Jörg
Lieber Jörg,
was für ein lehrreiches Werk! Die ausgeprägten Markstrahlen, das gut zu sehende Kambium, die Jahresringe und vor allem der Querschnitt durch die Knospe sind Highlights für Deinen kommenden Atlas der Pflanzenanatomie ;)
Herzliche Grüße
Mila
Lieber Jörg,
eine beachtenswerte Studie. Vielen Dank.
Freundliche Grüße
Bernhard Kaiser
Liebe Mila, lieber Bernhard,
vielen Dank für Euer großes Lob! Es war natürlich viel Glück dabei, morgens im Dunkeln ( ;D) eine Probe zu schneiden, die auf nur einem Teil des Umfangs so schön das sich bildende Periderm zeigt. Erst wollte ich an der fiesen, braunen Stelle gar nicht schneiden.
Vielleicht kann eine(r) unserer Botaniker(Innen) ja noch etwas zur Differenzierung der Zellen des Periderms sagen? Oder ist es dazu an der Schnittstelle vielleicht noch zu früh?
Herzliche Grüße
Jörg
p.s.
Liebe Mila, für einen solchen Atlas muss ich gefühlt noch eine ganze Menge Material sammeln - unter anderem auch jede Menge Mut und Erfahrung. Vielleicht in 10 Jahren mal?
;)
Hallo Jörg,
ein geeignetes Objekt vorzüglich präpariert und dokumentiert!
Gruss Arnold Büschlen
Lieber Jörg,
dem Lob der Anderen schließe ich mich natürlich an. Zu Deiner Frage, die ja bestimmt auch an mich gerichtet war: es ist wirklich nicht einfach, denn dieses Periderm ist ja noch ganz jung. Ich gehe mal so vor: die innersten Zellen müssen das Pelloderm sein. Einige Zelllagen darüber erkennt man (leider nicht immer) eine Lage auffallend schmaler Zellen. Das muss das Phellogen sein. Darüber liegt dann das vielschichtige Phellem, das noch kaum differenziert ist. Versuch einmal, dies nachzuvollziehen. Wenn gewünscht kann ich aber auch eines der Fotos beschriften.
Herzliche Grüße
Detlef
Liebe Interessierte,
nur eine kleine Ergänzung/Übersetzung:
Das Phellogen wird auch als Korkkambium bezeichnet und ist ein Meristem (Bildungsgewebe, es wird etwas generiert), dieses besteht aus einer Zellschicht und bildet nach innen (also zur Sprossmitte hin) das Peri Phelloderm, während nach außen Phellem (Kork) gebildet wird. Detlef schrieb es auch so, ich möchte nur ein bisschen ergänzen.
Eine Verkorkung kann ich hier noch nicht erkennen, das Sprösslein ist zu jung ;)
Herzlich-generierte Grüße
Mila
P.S.: Verbesserung: Periderm (sek. Abschlussgewebe) = Phelloderm + Phellogen + Phellem, s.u. :-[
Hallo Jörg,
auch von mir ein Kompliment, speziell für die Knospe.
Zu deiner Frage des jungen sekundären Abschlußgewebes kann ich mich nur Detlef anschließen. Am einfachsten vielleicht in den Bildern 14a, b nachzuvollziehen. Das Korkkambium besteht definitonsgemäß aus den, in radialer Richtung dünnsten Zellen, der gebildeten Zellstapel. in Bild 14 also die 3. oder 4. Zelle von innen. Pflicht ist auch der direkte Kontakt links und rechts zu den benachbarten meristematischen Zellen, so daß sich eine geschlossene Schicht bildet, wie das in dem Bild gut nachvollziehbar ist. Wenn auch, bei deinem Objekt, nur lokal. Ich habe die Pflanze leider nicht im Garten, aber ich vermute, daß sich hier eine Schuppenborke ähnlich der Platane bildet.
Dein pech ist momentan die Vegetationsruhe,so daß keine aktuellen Zellteilungen zu sehen sind. Aber auch wenn die suberinisierung der Zellwände im Phellem noch nicht abgeschloßen ist, kommt es zum Absterben des Rindenparenchyms durch die Blockade des radialen Stofftransportes.
Viel Spaß weiter, vielleicht auch mit den "Haftwurzeln" des Efeu wenn sie im Frühjahr wieder austreiben. Beobachte einfach die kreisrunden verkorkten Bereiche an der Unter- / Schattenseite des Sproßes.
Klaus
p.s. Stichwort "Cuticula" - hat schon jemand die Entwicklung der Cuticula im Verlauf des Blatt- / Sproßwachstums mikroskopisch begleitet ?
Ich habe da noch offene Fragen :-\
Gut, die beziehen sich speziell auf Sukkulente, aber da sollten sich auch Objekte der heimischen Flora finden lassen.
Hat jemand Lust auf einen neuen Thread?
Lieber Jörg,
wieder mal eine schöne umfassende Darstellung!
Auch mein Favorit ist die Knospe auf dem letzten Bild. Erstaunlich, das sie bei Frischmaterial so perfekt heil geblieben ist!
Liebe Mila,
danke für Deine Definitionen. Bei
Zitatund bildet nach innen (also zur Sprossmitte hin) das Periderm
ist Dir sicherlich ein Flüchtigkeitsfehler unterlaufen. Du meintest sicherlich
Phelloderm. Also noch einmal, damit es klar ist: Das Periderm = sekundäres Abschlussgewebe besteht aus Phelloderm innen, Phellem außen und dazwischen Phellogen = Korkkambium.
Herzliche Grüße
Detlef
Lieber Detlef,
Danke, Du hast völlig Recht. Ich sollte nicht posten, wenn ich völlig übermüdet bin, es tut mir leid. Ich verbessere meinen Beitrag entsprechend.
Viele Grüße
Mila
Hi Mila,
übermüdet odr nicht, verbessern ist doch schon passiert ;)
klaus
Danke für diesen Kommentar,
Gruß Mila
Lieber Jörg,
Glückwunsch zu dieser sehr gelungenen Arbeit! Enorm wie gleichmässig dünn Du so einen dicken und bestimmt auch nicht allzu weichen Spross mit der Hand geschnitten bekommst !
Ich glaube die Pflanze ist auch als Glanzmispel bzw. Glanzblatt im Handel?
Na ich habe sie auch im Garten im Bergischen stehen, der frische rote Austrieb ist immer wieder sehr schön.
Herzliche Grüsse
Holger
Lieber Jörg,
eine sehr interessante Arbeit.
Wie entstehen die Hohlräume im Rindenparenchym und haben die Lakunen eine Funktion ?
Gruß
Hans-Jürgen
Lieber Hans-Jürgen,
die Lacunen entstehen dadurch, dass sich im Verlauf der Differenzierung die Zellwände lokal auflösen. Sie dienen dem Gasaustausch, vergleichbar dem Schwammparenchym der Blätter.
Herzliche Grüße
Detlef
Hallo Detlef und Hans-Jürgen ;)
Schwammparenchym und Lakunen?
Also, im Verlauf der Differenzierung des Schwammparenchyms aus meristematischen Zellkomplexen ohne Interzellularen, löst sich meiner Meinung nach die Mittellamelle auf, um die Hohlräume / Lakunen für den Gasaustausch zu schaffen.
Es werden also keine Hohlräume geschaffen durch auflösen ganzer Zellen.
In den "Lakunen" des Objektes erkenne ich noch Reste Von bräunlich gefäbten Zellwänden. Wurden Öl-Idioblasten angeschnitten ?
Klaus
Was habe ich denn geschrieben?
Zitatdie Zellwände lokal auflösen
. Mittellamelle ist aber präziser, gebe ich zu.
Detlef
Lieber Jörg,
eine sehr interessante Arbeit.
Vielen Dank!
Hallo Detlef und Klaus,
danke für Eure Erklärung zu den Lakunen.
Gruß
Hans-Jürgen
Hallo Joerg
Der Schnitt durch die Knospe ist wirklich unglaublich, fuer uneingebettetes Material ist der wirklich genial ...
Der Rest und vor allem natuerlich die Gesamtheit des Threads ist natuerlich auch spitze!
Liebe Gruesse aus Wien :-)
Gerhard
Liebe Freunde,
herzlichen Dank für die vielen Blumen! :D Und natürlich auch für die weiterführenden Erläuterungen zum Periderm! Ich freue mich sehr, dass mein Artikel so viel Resonanz findet.
Bitte entschuldigt die späte Antwort, gestern hatten wir unseren MKB Abend und heute musste ich bis zum Feierabend abwarten.
Lieber Detlef,
ich werde meine Präparate einmal durchsehen, ob ich eine Stelle finde, an der das Phellogen gut erkennbar ist. Gerne kannst Du aber auch eines der Bilder aus dem Eingangsposting beschriften und hier einstellen.
Lieber Klaus (Omaruru),
ja, die Knospe ist Gott sei Dank erhalten geblieben, auch wenn der zugehörige Schnitt etwas dick ist. Beim ersten Schnitt hat es da ja einen kleinen Unfall gegeben, aber leider war da nichts mehr zu retten.
In den Bilder 14 a/b kann man das Phellogen tatsächlich recht gut ausmachen. Es wirkt so, als ob sich das Korkcambium zwischen das Phloem und das Rindenparenchym schieben würde. Was setzt wohl den Startschuss? Warum werden Zellen irgendwann merestematisch und beginnen hier mit dem Aufbau des Periderms? Eine - wie ich finde - spannende Frage, die man leider nicht mit dem Mikroskop beantworten kann.
Ist es überhaupt so, dass sich das Meristem von einem Ausgangspunkt weiter "vor arbeitet" - oder bildet sich das Phellogen fortschreitend aus "normalen" Parenchymzellen?
Du hast Recht: in den Bildern 11 bis 13 kann man schön sehen, wie das Rindenparenchym durch das neu gebildete Periderm von den Markstrahlen abgeschnitten wird. In der Beschreibung des Periderms unter Bild 11 habe ich den Mechanismus auch schon angesprochen.
Lieber Klaus (Herrmann),
das Frischmaterial lässt sich oft erstaunlich gut schneiden. Eckhart hat es vor gemacht und seine Methode funktioniert. Hast Du übrigens die schwarzen "Flecken" in Bild 13 a/b gesehen? Die erinnern mich stark an die "Kellergeister" in Deinen Schnitten vom Phyllocladium der Schirmtanne. In meinem Fall handelt es sich um im Zelllumen eingeschlossene Luft, die leider durch keinen Trick zum Verlassen ihrer Behausung zu überreden war. Unterdruck hätte vielleicht funktioniert, aber das war mir zu aufwendig.
Lieber Holger,
nach meiner Erfahrung lässt sich einigermaßen stabiles Material - besonders in frischem Zustand - recht gut schneiden. Allerdings bedarf es bei der Führung des Klingenhalters eines recht großen Andrucks. Es besteht die Gefahr, dass der Probenzylinder bei der Schnittführung angehoben wird, was sich aber durch ein möglichst zähes Fett vermeiden oder zumindest einschränken lässt. Umständlich aber sehr effektiv ist es, die Klemmschraube während der Schnittführung nach unten zu drücken.
Als Glanzmispel wird der Red Robin (Photinia x fraseri) geführt. Dazu habe ich hier (http://www.mikroskopie-forum.de/index.php?topic=8505.0) schon mal Schnitte gezeigt. Auch er zeigt im Frühjahr leuchtend rote Blätter, die im Laufe des Jahres grün werden. Die Blüte ist allerdings eher eine Dolde kleiner fünfzähliger Einzelblüten. Als Glanzblatt wird neben dem Red Robin wohl auch eine Rhododendron-Art (Rhododendron yakushimanum) bezeichnet.
Lieber Hans-Jürgen,
Deine Frage zu den Lakunen haben Detlef und Klaus ja schon beantwortet?
Allen herzliche Grüße!
Jörg
p.s.
Lieber Klaus,
zeig' uns doch einmal in einem neuen Thread Deine Schnitte zur Cuticula und lass uns sehen, warauf es Dir an kommt. Das wird sicher die eine oder andere Aufnahme zu Tage fördern.
In meinem eigenen Fundus gibt es eine Aufnahme zur Cuticula des Buchsbaums, die mir sehr gut gefällt. Du findest Sie im entsprechenden Thread hier (http://www.mikroskopie-forum.de/index.php?topic=4642.15).
Liebe Freunde,
ich habe die Präparate einmal durchgesehen, leider gibt es in keinem eine "Bilderbuchstelle", anhand deren man eindeutig Phellem (Ph), Phellogen (Pg) und Phelloderm (Pd) unterscheiden könnte. Also habe ich mir noch mal das Bild 14 vorgenommen und versucht, die Zellschichten entsprechend zu beschriften.
Bild 14c: Die Zellschichten des Periderms, Bilddaten wie Bild 14a/b.
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures002/83625_156697.jpg) (http://www.fotos-hochladen.net)
Beschriftung wie oben: Phellem (Ph), Phellogen (Pg) und Phelloderm (Pd).
Wenn ich daneben liege, bitte ich um Korrektur.
Herzliche Grüße
Jörg
Lieber Jörg,
goldrichtig, das ist genau, was ich versucht habe, mit Worten zu erklären.
Herzliche Grüße
Detlef
Lieber Detlef,
vielen Dank für Deine Bestätigung. Ich glaube, so langsam freunde ich mich mit dem Periderm an. :D
Herzliche Grüße
Jörg
Lieber Jörg,
ein Versuch einer Antwort zu deinen Fragen.
Also, wenn ich deine Bilder richtig interpretiere, entsteht das Korkkambium aus den äußersten - ältesten - Phloemschichten oder aus der innersten Rindenparenchymschicht. Die Entstehung sekundärer Bildungsgewebe bei - Apikalmeristem von Sproßbürtigen Wurzeln oder "schlafende Augen der Sproßorgane" - wird sicher hormonell gesteuert. Startschuß, meiner Meinung nach in einer Zelle der prädeterminierten Zellschicht und dann Ausbreitung nach rechts und links durch "weitersagen". Sprich, wenn eine Zelle sich hormonell getriggert entschieden hat - ich meine es wie ich schreibe - sich wieder zu teilen, obwohl sie eigentlich schon ausdifferenziert ist ( beim Menschen überhaupt nicht üblich und unter Krebs oder allgemein Tomor bekannt ), gibt sie sie ihren Nachbarn rechts, links, oben und unten ihre Entscheidung im direkten plasmatischen Kontakt ( Plasmodesmen ) per Hormon, Enzym; Biophotonen ??? bekannt. Diese machen dann mit und die Teilungsfreude breitet sich flächenhaft aus.
Deinen Unterschied zwischen "vor arbeiten" und "fortschreiten" ??? kann ich nicht nachvollziehen. Ob die Zellen Dehnungsrezeptoren haben? Umfangvergrößernde Teilungen sind ? nur im Bereich der Markstrahlen üblich?
Noch eine Anmerkung zu deiner Beschriftung von Bild 8. Den Begriff "Skl1 = sklerenchymatisches Phloemparenchym" finde ich etwas gequält. Ich bevorzuge Bastfaser. Phloem besteht nur aus Siebzellen und Geleitzellen. Die Bastfasern beginnen zwar parenchymatisch, enden aber ausdifferenziert als tote Sklerenchymfaser, also wenig parenchymatisch.
Was die Cutikula angeht werde ich meine Bilder zusammensuchen.
Liebe Grüße
Klaus
Lieber Klaus,
vielen Dank für Deine Erläuterungen zur Umwandlung von Phloem- oder RP-Zellen hin zum Phellogen! Damit hast Du meine Vermutung einer fortschreitenden Umwandlung gestützt, bei der benachbarte Zellen des neu gebildeten Meristems quasi "angesteckt" werden, sich ebenfalls wieder zu teilen.
Mit "vorarbeiten" meinte ich, dass sich das Meristem ausgehend von einer einzelnen Zelle durch Zellteilung weiter ausbreitet und sich so quasi zwischen bestehende Zellverbände schiebt. Da sollten dann aber auch entsprechende mechanische Rissbildungen an den Grenzzonen erkennbar sein, was ja nicht der Fall ist.
Danke auch für den begriff Bastfasern - wieder was gelernt. :)
Ich freue mich auf Deinen Cuticula-Thread!
Herzliche Grüße
Jörg