Mikro-Forum

Liebe Pflanzenfreunde,

rechtzeitig zu Sankt Martin was zur Gans! Für einen Botaniker nicht ganz einfach, aber es gibt ja die Gattung der Gänsefüße (Chenopodium) und der Weiße Gänsefuß ist als Ruderalpflanze recht häufig, und steht bei uns - den Wetterkapriolen sei Dank - sogar noch in voller Blüte. Außerdem hat er auch sonst noch einiges zu bieten, was wir uns nacheinander anschauen werden.

Sicher erinnert Ihr Euch: Hans-Jürgen hat uns Anfang September die Garten-Melde (Atriplex hortensis) (https://www.mikroskopie-forum.de/index.php?topic=32273.0) vorgestellt. Ob der dort diskutierten Besonderheiten habe ich versucht, die Pflanze ebenfalls zu finden, leider erfolglos. Daher muss nun der Weiße Gänsefuß her halten.

Wie immer zunächst einige Informationen zur Pflanze selbst!

Der Weiße Gänsefuß (Chenopodium album), auch Weiß-Gänsefuß genannt, ist eine Pflanzenart aus der Gattung Gänsefuß (Chenopodium) in der Familie der Fuchsschwanzgewächse (Amaranthaceae). In Mitteleuropa meist als landwirtschaftliches Unkraut betrachtet, dient er in anderen Regionen als Gemüse, Pseudogetreide oder Futterpflanze. Die Erstbeschreibung von Chenopodium album erfolgte 1753 durch Carl von Linné in Species Plantarum.

Weitere Trivialnamen sind Ackermelde, Melde oder Falsche-Melde. Umgangssprachlich verbreitet sind ob seines Geruchs auch Dreckmelde, Mistmelde, Saumelde oder auch Schissmelle, Schissmehl, Schiissmalter und Hundsschiss, sowie Burket (Chur), Gösche (Altmark), Heimkuhkraut (Tirol im Pongau), Lusenmellen (Unterweser), Mell (Altmark), Mellen (Unterweser), Messmal (Altmark), Messmill (Pommern), Mistmilten, Wild Molten, Säumelde (Eifel), Schissmalter (St. Gallen), Schissmelde, Schissmell (Eifel) und Schissmölten (Schlesien).

Bild 1: Der Weiße Gänsefuß auf einem schmalen Ruderalstreifen zwischen einem Zaun und einem Weg. Ein typischer Standort.
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241515_22597652.jpg)

Der Weiße Gänsefuß ist heute nahezu weltweit verbreitet, vor allem in den gemäßigten bis subtropischen Zonen, und spaltet sich in zahlreiche regionale Formen auf. In Amerika gilt er als eingeführte Art. Die Ausdehnung des natürlichen Verbreitungsgebietes in Eurasien ist unklar, als Ursprungsgebiet wird aber das Himalaja-Gebiet vermutet. In Pakistan erreicht er Höhenlagen bis 4300 m.
Der Weiße Gänsefuß kommt im gesamten Europa als Archaeophyt oder eventuell einheimische Art vor, nur im äußersten Norden (Island, Spitzbergen) ist er erst in neuerer Zeit eingeführt worden.
Man findet ihn in Mitteleuropa verbreitet in Ruderalvegetation und Unkrautfluren, vor allem als Erstbesiedler auf Schuttplätzen, an Wegen, in Äckern und Gärten, auch an Ufern und in Schlägen. Er gedeiht auf allen ausreichend nährstoffreichen Böden. Seit der jüngeren Steinzeit ist er ein Kulturbegleiter.

Bild 2: hier wird deutlich, woher der Name Gänsefuß kommt
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241515_10261382.jpg)

Im System der Pflanzensoziologie ist er eine Klassencharakterart (Zeigerpflanze) der Ruderalgesellschaften und der Acker- und Garten-Beikraut-Gesellschaften (Chenopodietea).

Bild 3: Der Spross mit seiner charakteristischen Streifung, die ihre Entsprechung in der Anatomie der Pflanze hat
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241515_59109011.jpg)

Der Weiße Gänsefuß ist eine einjährige krautige Pflanze, die Wuchshöhen zwischen 10 und 150 (selten bis 300) cm erreicht und bis zu 1 Meter tief wurzelt. Der meist aufrechte Stängel ist gelblich grün, grün gestreift, vor allem im Herbst auch rötlich überlaufen oder mit roten Flecken in den Blattachseln und ist besonders im Blütenstand stark durch Blasenhaare mehlig bestäubt. Er ist oft stark verzweigt, im unteren Teil mit bogig aufsteigenden, im oberen Teil mit aufrechten Seitenzweigen.

Bild 4: Die Blattform von Chenopodium album ist sehr variabel
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241515_42659827.jpg)
Von links nach rechts: ein Blatt aus dem Blütenstand, eines knapp unterhalb des Blütenstandes, ein kleines und ein voll ausgebildetes Laubblatt.

Die wechselständigen Laubblätter sind 1 bis 2,5 cm lang gestielt. Die unterseits bemehlte, oberseits meist kahle Blattspreite mit einer Länge von 2 bis 6 (bis 10) cm und einer Breite bis 5 cm ist sehr vielgestaltig: meist rhombisch-eiförmig bis breit lanzettlich, manchmal schwach dreilappig, länger als breit, mit keilförmiger Basis. Der Blattrand ist meist unregelmäßig bogig gezähnt, schwach gesägt oder auch ganzrandig. Die oberen Blätter sind lanzettlich und meist ganzrandig. Der bemehlte Eindruck entsteht durch dicht sitzende Blasenhaare, die der Ausscheidung nicht benötigter oder für die Pflanze schädlicher Salze dienen.

Bild 5: Die Rückseiten der vier Blattformen
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241515_40644060.jpg)

Bild 6: Ein Blick durch die Lube zeigt die Blasenhaare auf der Blattunterseite
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241515_17043416.jpg)

Die Blütezeit reicht in Mitteleuropa von Juli bis Oktober, die Bestäubung der Blüten erfolgt in der Regel durch den Wind. Die Blütenstände sind endständige oder in den oberen Blattachseln entspringende, verzweigte ährenartige Rispen. Die zwittrigen Blüten sitzen in Knäueln von 3 bis 4 mm Durchmesser zusammen, Vorblätter fehlen. Die Blütenhülle besteht aus fünf bis fast zur Basis getrennten Tepalen von 1 mm Länge und Breite, die stumpf eiförmig, bemehlt, hautrandig und auf dem Rücken gekielt sind. Die Blüten enthalten fünf Staubblätter mit herausragenden Staubbeuteln und einen Fruchtknoten mit zwei Narben.

Bild 7: Ein Blick auf den Blütenstand des Weißen Gänsefußes
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241515_28756230.jpg)

Bild 8: Auch die Details der Blüten sind nur unter der Lupe zu erkennen. Auch hier wieder die beschriebenen Blasenhaare
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241515_18961937.jpg)
Bild 6 und 8 sind mit dem NexYZ von Celestron und dem Mobiltelefon an einer kleinen Präparationslupe entstanden.

Zur Reifezeit wird die flach-eiförmige Frucht größtenteils von der Blütenhülle bedeckt und fällt zusammen mit dieser ab. Die dünne Fruchtwand liegt dem linsenförmigen Samen mehr oder weniger an. Dieser erreicht einen  Durchmesser von 1 bis 1,5 mm und enthält reichlich Nährgewebe. Die schwarze Samenschale ist glatt und glänzend oder weist schwache radiale Streifen auf.

Die Ausbreitung der Diasporen erfolgt als Wind- und Tierstreuer, auch Selbstausstreuer und (bei Sturm) ein Ballonflieger, außerdem Bearbeitungsausbreitung durch Sperlinge. Es wurde berechnet, dass eine große Pflanze bis zu 1,5 Millionen Samen produziert. Vielfach finden sich deshalb im Boden reichlich Samen dieser Art, die dazu noch sehr langlebig sind und bis zu 1700 Jahre erhalten bleiben. Die Samen können in mesophil betriebenen (30 °C bis 35 °C) Biogasanlagen bis zu 3 Wochen im Substrat überstehen.

Bild 9: Illustration zu Chenopodium album
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241515_47980820.jpg)
Aus Wikipedia von Carl Axel Magnus Lindman - «Bilder ur Nordens Flora» Stockholm, ca. 1926, gemeinfrei

Der Weiße Gänsefuß ist eine Nahrungspflanze für die Raupen zahlreicher Schmetterlingsarten. In der HOSTS-Datenbank sind dazu 69 Einträge aufgeführt. Die Samen sind eine wichtige Nahrungsquelle für zahlreiche Vögel während der Herbst- und Wintermonate, insbesondere für Sperlinge. Die Blätter werden vom Vieh und Rehwild gefressen.
Aber nicht nur Tiere mögen die Pflanze: aus den Blättern und den Blütenständen lässt sich ein schmackhaftes Gemüse zubereiten. man sollte nur darauf achten, dass die Pflanzen dazu nicht zu nah an den üblichen Hunderennstrecken wachsen ... ;)

Chenopodium album ist eine äußerst formenreiche Art, daher ist ihre Systematik noch nicht abschließend wissenschaftlich behandelt. Zum Chenopodium-album-Aggregat gehören hunderte Kleinarten, Unterarten, Varietäten oder Formen. Erschwerend kommt hinzu, dass der Weiße Gänsefuß mit verwandten Arten Hybriden bildet.
Einer der Trivialnamen lautet Ackermelde oder Falsche Melde. Dies beziegt sich auf die Garten-Melde (Atriplex hortensis), die dem Weißen Gänsefuß recht ähnlich sieht.
Da sich der beschriebene Gestank (siehe weitere Trivialnamen) nicht einstellen wollte, nehme ich an, auch eine Hybride erwischt zu haben ...

quelle Wikipedia (https://de.wikipedia.org/wiki/Wei%C3%9Fer_G%C3%A4nsefu%C3%9F)

Bild 10: Eine weitere schöne Illustration, die ich euch nicht vorenthalten möchte
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241515_11653293.jpg)
Aus Wikipedia von Jacob Sturm – Zeichnung aus Deutschlands Flora in Abbildungen, Quelle  http://www.biolib.de


Zur Präparation:

Geschnitten habe ich die frischen Pflanzenteile: Spross und Wurzel freistehend und das Blatt in Möhreneinbettung auf dem Handzylindermikrotom mit Leica Einmalklingen im SHK Halter.
Die Schnittdicke beträgt je etwa 50 µm.
Diesmal kam eine von Bob entwickelte kleine Schneidehilfe zum Einsatz, die es erlaubt, die Probe beim Schnitt gegen das Messer abzustützen. Das Kunststoffplättchen mit vielen praktischen Kerbungen für unterschiedlich starke Proben oder auch ein Möhrenklötzchen geht auf Rainer Täubners Praxis zurück, seine Schnitte mit zwei übereinander gelegten Objektträgern abzustützen. Somit wird ein kleiner Nachteil des SHK Halters aufgefangen, der ja wegen des Teflon-Gleiters deutlich oberhalb der Glasplatte eines Handzylindermikrotoms schneidet.

Nachtrag: mehr zu Bobs Schneidehilfe findet sich auf der Webseite des MKB: http://www.mikroskopie-bonn.de/bibliothek/botanische_mikrotechnik/282.html (http://www.mikroskopie-bonn.de/bibliothek/botanische_mikrotechnik/282.html)

Bild 11: Die Schneidehilfe von Bob
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241515_54636159.jpg)

Nach einer Schnittfixierung in AFE für ca. 24 Stunden wurden die Schnitte gut mit Aqua dest. ausgespült. Eine Bleiche z.B. mit Chloralhydrat war nicht notwendig.

Gefärbt habe ich mit frisch angesetztem W3Asim I nach Rolf-Dieter Müller für 7 Minuten mit einmaligem kurzen Erwärmen bis kurz vor den Siedepunkt.s
Eine Beschreibung der Färbung findet Ihr hier: W3Asim II im Vergleich auf der Seite des MKB (http://www.mikroskopie-bonn.de/bibliothek/botanische_mikrotechnik/157.html).
Nach der Färbung wurden die Schnitte in Aqua dest. für weitere 24 Stunden mit mehrmaligem Wechsel sanft differenziert.

Eingedeckt sind die Schnitte - nach gründlichem Entwässern in reinem Isopropanol - wie immer in Euparal.

Bilder 12a-c: Die Schneidehilfe im Einsatz an meinem "Tempelchen"
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241515_42708074.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241515_42815147.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241515_47633461.jpg)


Zur verwendeten Technik:

Die Aufnahmen sind auf dem Leica DMLS mit dem 5x NPlan, den 10x, 20x und 40x PlanApos und dem 100x PlanFluotar entstanden. Die Kamera ist eine Panasonic GX7, die am Trinotubus des Mikroskops ohne Zwischenoptik direkt adaptiert ist. Die Steuerung der Kamera erfolgt durch einen elektronischen Fernauslöser. Die notwendigen Einstellungen zur Verschlusszeit und den Weißabgleich führe ich vor den Aufnahmeserien direkt an der Kamera durch. Der Vorschub erfolgt manuell anhand der Skala am Feintrieb des DMLS.

Alle Mikroaufnahmen sind mit Zerene Stacker V1.04 (64bit) gestackt. Die anschließende Nachbereitung beschränkt sich auf die Normalisierung und ein leichtes Nachschärfen nach dem Verkleinern auf die 1024er Auflösung (alles mit XNView in der aktuellen Version). Bei stärker verrauschten Aufnahmen lasse ich aber auch mal Neat Image ran.

Mal wieder zu lang! ich muss auftrennen, gleich geht es weiter ... :)

Und weiter geht's! :)

Nun zu den Schnitten 

Beginnen möchte ich mit dem Spross, der eine Besonderheit aufweist, die uns schon bei der Gartenmelde beschäftigt hat und von Detlef mit dem Verweis auf die ANATOMY OF THE DICOTYLEDONS, VOLUMES I AND II, von C. R. Metcalfe und L. Chalk aufgeklärt wurde. Aber immer der Reihe nach!

Bilder 13a-f: Sprossquerschnitt in der Übersicht, Bilder 13a-d von einem recht dünnen Sprossstück (a&b frisch, c&d gefärbt), Bilder 13e&f von einem dickeren gefärbten Stück. Bilder 13b,d&f mit Beschriftung; alle Aufnahmen gestapelt
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_63130991.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_22322349.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_64981649.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_38493088.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_54467399.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_35113868.jpg)
Auf den ersten Blick erkennen wir den typischen Sprossaufbau einer krautigen Pflanze: von Außen nach Innen finden wir an den Ecken des polyedrischen Sprossquerschnitts ausgeprägte Kantenkollenchyme zur Stabilisierung der Struktur. Dazwischen finden wir, in den frischen Schnitten schön zu sehen, Felder, deren Zellen viele Chloroplasten enthalten (daher hier als AP gekennzeichnet). Darunter folgt ein Rindenparenchym, in das eine Vielzahl von Calciumoxalatdrusen eingebettet ist. Dann - teils unterbrochen - ein feiner Ring wenig lignifizierter Sklerenchymfasern. Darunter dann der Leitbündelring und das Markparenchym, das ebenfalls einige Calciumoxalatdrusen enthält.
Schaut man aber genauer hin, wird klar, dass der Leitbündelring nicht ganz so klassisch aufgebaut ist. Wir sehen einen recht dünnen Phloemring, in dem Gruppen von Sieb- und Geleitzellen in einem Phloemparenchym eingebettet sind. Dahinter liegt - ohne erkennbares Cambium - ein Xylemring mit Tracheen und Tracheiden. Soweit so gut.  An einigen Stellen folgt nun aber in der Form eines eigenständigen Leitbündels eine Phloeminsel und ein weiteres Xylem. Die Phloeminsel macht die Struktur auffällig: so etwas ist recht selten uznd war hier im Forum bisher nur bei der Gartenmelde von Hans-Jürgen zu sehen. 
Informationen zu den Abkürzungen in den beschrifteten Bildern 13b,d&f sowie den folgenden beschrifteten Bildern findet Ihr wie immer auf der Webseite des MKB: Tabelle mit den Kürzeln und den zugehörigen allgemeinen Erläuterungen (http://www.mikroskopie-bonn.de/bibliothek/botanische_mikrotechnik/index.html#a2409).

Bild 14: Aus ANATOMY OF THE DICOTYLEDONS, VOLUMES I AND II, von C. R. Metcalfe und L. Chalk
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_36620214.jpg)
Die Autoren schreiben dazu: "The apparent medullary vascular strands (Fig ...) which are visible in some species are said, in most instances, to be leaf traces."

Bei den hinter dem "klassischen" Leitbündelring im Mark ("medullary") liegenden Leitbündeln handelt es sich somit mit hoher Wahrscheinlichkeit um Blattspuren, die weiter oberhalb (apical) den Leitbündelring durchbrechen um dann über den Blattstiel ein Blatt zu versorgen.
Ein Beweis - zumindest in Bildform - steht noch aus: ich hatte nicht erwartet, beim Gänsefuß auf diese Struktur zu stoßen und war beim Blick auf die Schnitte etwas überrascht.

Schauen wir uns nun die einzelnen Strukturen noch einmal im Detail an.

Das Kantenkollenchym an den Sprossecken

Bilder 15a-e: Kantenkollenchym am dünnen Spross (apical), Bilder 15a-c vom frischen Schnitt, Bilder 15d&e gefärbt, Bild 15c im Polarisationskontrast. Bilder 15b&e mit Beschriftung; alle Aufnahmen gestapelt
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_37296927.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_640117.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_28805302.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_21170186.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_13134304.jpg)

Bilder 16a-d: Kantenkollenchym am dicken Spross (basal), Bilder 15a&b vom frischen Schnitt, Bilder 15c&d gefärbt, Bilder 15b&d mit Beschriftung; alle Aufnahmen gestapelt
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_54172779.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_21855962.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_43994237.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_33583636.jpg)

In beiden Situationen zeigt sich ein ausgeprägtes Kantenkollenchym, das hier zur Stabilisierung den eher schwach ausgeprägten Xylemring unterstützen muss. Der Stängel vom Weißen Gänsefuß ist übrigens erstaunlich zäh und kann nicht einfach durchgebrochen werden. Insbesondere in den Bildern 16 finden wir wieder die schon weiter oben besprochenen Leitbündel im Markparenchym mit der auffälligen Phloeminsel. Diese schauen wir uns nun noch einmal etwas genauer an.

Bilder 17a-i: Impressionen von den Leitgeweben im Spross des Weißen Gänsefußes, Bilder 16a&b vom frischen Schnitt, alle anderen Aufnahmen gefärbt. Bilder 17b,d,f&h mit Beschriftung; alle Aufnahmen gestapelt
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_34868631.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_25584554.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_10454271.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_680171.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_30607723.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_35170261.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_39157888.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_17274517.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_39155797.jpg)
In den oben gezeigten Bildern wird die außergewöhnliche Abfolge Phloem - Xylem - Phloem - Xylem noch einmal an verschiedenen Beispielen deutlich. Spannend finde ich, dass es im Phloemring nur sehr kleine Flächen mit Sieb- und Geleitzellen zu geben scheint, während die Phloeminseln der Blattspuren doch recht stark ausgeprägt sind.

In Bild 17d indes lauert eine kleine Falle, die ich mit SP? für Siebplatte gekennzeichnet habe. Aber sehen wir hier wirklich Siebplatten? Fluchs mal etwas Öl auf die Linse und ...

Bilder 18a,b: Phloemgewebe im gefärbten Präparat, Bild 18b mit Beschriftung, Aufnahme gestapelt
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_17180427.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_34921712.jpg)
Die stärkere Vergrößerung bringt es an den Tag: nix is mit Siebplatten, es handelt sich um ein Artefakt - sprich Schmodder - über den Zellen, wie an der mit dem roten Pfeil gekennzeichneten Stelle deutlich wird. Außerdem sind Sieb- und Geleitzellen gleichermaßen betroffen. Hier hat sich das genaue Hinsehen gelohnt, obwohl ich schon etwas enttäuscht war.

Bevor wir den Spross verlassen, noch ein Blick auf das Assimilationsparenchym, dass eingegrenzt von den Kollenchymen zwischen Rindenparenchym und Epidermis liegt. Hier finden wir die Ursache für die makroskopisch beschriebene Streifung des Sprosses (siehe Bild 3). Die helleren Streifen gehen dabei auf das unter der Epidermis liegende chloroplastenlose Kollenchym zurück, die dunkleren auf das kräftig grüne Assimilationsparenchym.

Bilder 19a-d: Assimilationsparenchym des Sprosses, Bilder 18a&b vom frischen Schnitt, Bilder 19b&d mit Beschriftung, alle Aufnahmen gestapelt
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_27973187.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_50833863.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_5822459.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_60684095.jpg)
Im Gegensatz zum Rindenparenchym sitzen die Chloroplasten in den kleineren Zellen zwischen den Kollenchymen ähnlich dicht, wie in den Assimilationsparenchymen von Blättern. 

Die folgende Aufnahme von einem gefärbten Schnitt im Polarisationskontrast zeigt noch einmal den Ring von Calciumoxalatdrusen im Rindenparenchym unterhalb des Kollenchyms bzw. Assimilationsparenchyms:

Bild 20: Äußere Sprossgewebe im Polarisationskontrast
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_46429731.jpg)

Werfen wir nun einen schnellen Blick auf das Blatt! Die Schnitte hier sind nicht so schön geworden, sondern vielfach ausgerissen. Und das hat einen Grund.

Bilder 21a-h: Frische und gefärbte Querschnitte vom Blatt des Weißen Gänsefußes, Bilder 21b,d,f&h mit Beschriftung; alle Aufnahmen gestapelt
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_8963119.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_687191.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_30923613.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_49385318.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_7746814.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_13062350.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_50934842.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_10366524.jpg)
Wir finden ein klassisches bifaziales Blatt mit Assimilationsparenchym und Schwammparenchym in der Blattspreite. Die Mittelrippe ist auf der Blattunterseite erhaben und wird oben und unten von kleinen Kollenchymen stabilisiert. Insbesondere in der Blattspreite gibt es wieder jede Menge Calciumoxalatdrusen. Und die führen mit ihrer außergewöhnlichen Größe zum Ausreißen der Schnitte, da sie vom Messer oft nicht zerteilt sondern mit geschoben werden:

Bild 22: Ausgemessene Calciumoxalatdrusen in der Blattspreite von Chenopodium album
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_63840421.jpg)
Die Drusen haben einen Durchmesser von gut 0,1 Millimeter. In dieser Größe habe ich sie noch nicht gesehen.

Nun bleibt uns noch die Wurzel dieser auch mikroskopisch sehr ergiebigen Probepflanze. Und auch dort gibt es etwas ungewöhnliches zu entdecken.

Bilder 23a-d: Wurzel des Weißen Gänsefußes im Querschnitt, Bilder 23b&d mit Beschriftung. Alle Aufnahmen gestapelt
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_54246671.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_25181126.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_59408853.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_56152722.jpg)
Interessant die unterschiedliche Farbwirkung der Aufnahmen. Die Bilder 23c&d sind direkt nach der Färbung in Wasser entstanden, die Bilder 23a&b stammen von Präparaten in Euparal. Beide Male Schnitte aus dem selben Färbegang. Wirklich spannen ist hier aber die wechselnde Abfolge mehrerer Ringe von Xylem und Phloem und der insgesamt sehr verflochtene Verlauf der Leitgewebe. Ich habe recht weit oben geschnitten, um einen möglichst großen Durchmesser zu erfassen und denke, dass die Schnitte zumindest Teile des Übergangs ins Hypocotyl zeigen.

Bilder 24a,b: eine Seitenwurzel zweigt ab, Bild 24b mit Beschriftung; Aufnahme gestapelt
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_43844556.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_26847985.jpg)
Leider ist der Schnitt durch und an der Seitenwurzel etwas dick geraten, aber die Anbindung an die Gewebe der Hauptwurzel ist trotzdem gut zu erkennen.

Zum Abschluss geht es noch etwqas näher heran. Die verdrehten Tracheen haben einen ganz eigenen Reiz und da gibt es noch Kristalle, die im polarisierten Licht nicht aufleuchten ...

Bilder 25a-c: Details mit Tracheen, Tüpfeln und Kristalleinlagerungen im Xylemparenchym, Bild 245 mit Beschriftung; alle Aufnahmen gestapelt
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_199777.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_8990007.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241516_1897140.jpg)
Die gewundenen Tracheen zeigen schön ihre Tüpfelfelder und in einigen Zellen des Xylemparenchyms stecken rautenförmige Kristalle, die im polarisierten licht nicht aufleuchten. Auch wenn die rhomboedrische Form stark an Calciumoxalat erinnert: was könnte das sein?

Vielen Dank fürs Lesen, Anregung und Kritik sind wie immer willkommen.

Herzliche Grüße
Jörg

Hallo Jörg,
Deine Frage kann ich leider nicht beantworten, doch möchte ich mich für Deine tollen Bilder mit  den interessanten Erklärungen bedanken! Einfach toll!!
Herzliche Grüße
Werner

Zitatrautenförmige Kristalle, die im polarisierten licht nicht aufleuchten.

Lieber Jörg,

das kann ich nicht glaunben. Sie sind sicher nich kubisch, sollten also doppelbrechend sein und da sie wirr durcheinander liegen sollten sie auch mal eine vorteilhafte Lage haben. Gib dir Mühe! 8)

Ansonsten natürlich wie immer überwältigend!

Lieber Werner, lieber Klaus,

vielen dank für Euer lob, das mich wie immer sehr freut!

Die rhomboedrischen Kristalle aus den Bildern 25 zeigen tatsächlich keine Doppelbrechung. Im Gegensatz zu den Drusen im übrigen Gewebe, wie man in den Pol-Bildern (z.B. Bild 20) gut sehen kann. Mir fällt aber auch nichts ein, was in den Wurzeln sonst noch in der Form eingelagert sein könnte.

Herzliche Grüße
Jörg

Lieber Jörg,

ZitatDie rhomboedrischen Kristalle aus den Bildern 25 zeigen tatsächlich keine Doppelbrechung

Kannst du bitte mal ein Polbild zeigen von der Stelle? Sind die Kristalle dann schwarz? Und hast du die Möglichkeit noch ein Lambda (oder Cellophanfolie) nach dem Polarisator aufzulegen?
Vielleicht ist ja die Doppelbrechung klein und die Kristalle sehr dünn.

Lieber Klaus,

mach ich morgen. Da gibt es wirklich keinerlei Reaktion.
Mit einem Hilfsobjekt habe ich es noch nicht probiert, auch das kommt.

Herzliche Grüße
Jörg

Lieber Klaus, liebe Pflanzenfreunde,

heute bin ich noch einmal auf die jagt nach den Kristallen in den Parenchymzellen des Wurzelgewebes gegangen.
Hier, was ich gefunden habe:

Bilder 26a,b: Wurzelquerschnitt, gefärbt mit W3Asim I. Aufnahme der selben Stelle mit gekreuzten (26a) und parallelen Polfiltern (26b)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241607_44624228.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241607_17654054.jpg)

Hier zeigt sich aus meiner Sicht, dass die Kristalle doch doppelbrechend sind, auch wenn diese Eigenschaft von den umliegenden, gefärbten Geweben überstrahlt wird. So kam für mich in den Bilder 25 der Eindruck zustande, dass es keine Doppelbrechnung gibt. So kann man sich irren.

Bild 27: Hier eine andere Stelel aus dem Präparat, wieder bei gekreuzten Polfiltern:
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241607_52727599.jpg)

Die Aufnahmen vor dunklem, sprich dünnen Hintergrund zeigen die Doppelbrechung gerade bei gekreuzten Filtern sehr schön.

Was denkt Ihr?

Herzliche Grüße
Jörg

Hallo Jörg,
wieder einmal suuupeeerr!!
Da staunt der Fachmann und der Laie wundert sich.
Gratulation !!
Gruß vom Laien   Peter

ZitatWas denkt Ihr?

Lieber Jörg "wir" denken, dass die Welt wieder im Lot ist und ich danke dir für die Mühe das Thema nun doch noch befriedigend zu lösen. Dat iss es!

Lieber Peter,

vielen Dank für Dein Lob, es freut mich, dass Dir der Thread gefällt!

Lieber Klaus,

ja, so sieht es aus. Ich hatte nicht gedacht, dass in einem dicken Schnitt die Doppelbrechung bei gekreuzten Polfiltern komplett überstrahlt wird, andererseits konnte ich mir bei der Kristallform auch nichts anderes als Calciumoxalat vorstellen.

Herzliche Grüße
Jörg

Zitatandererseits konnte ich mir bei der Kristallform auch nichts anderes als Calciumoxalat vorstellen.

Sach ich doch lieber Jörg: erst Mal das nächstliegende annehmen. Man könnte jetzt noch einen Färbeversuch mit Anthracengrün machen. Habe ich mal vor Jahren am Forsythienspross gemacht:

Hallo Jörg,

vielen Dank für diesen tollen Beitrag. Deine Fotos mit "NexYZ von Celestron und dem Mobiltelefon an einer kleinen Präparationslupe " sind sehr gut geworden - magst Du den Aufbau mal zeigen?
Ich habe Dir eine aktualisierte Form der Schneidehilfe geschickt, diesmal mit Fingerschutz-Rippe in der Mitte, damit wir nicht als nächstes histologische Schnitte von Dir zu sehen bekommen. ::).

Viele Grüße,

Bob

Lieber Klaus,

Anthracengrün habe ich nicht. Ich nehme an, Du hast das auch in Deinem Bauchladen? ;)
Wie sieht denn die Färbevorschrift aus?

Lieber Bob,

auch Dir vielen Dank für Dein Lob und auch hier noch mal für die Schneidehilfe. Den zweiten Entwurf werde ich wahrscheinlich schon am Wochenende testen können.
Histologie liegt mir nicht. Wenn ich da mal Schnitte mache, sind die meist zu dick, schmerzhaft und rot überspült ... ;)

Euch beiden herzliche Grüße
Jörg

Liebe Pflanzenfreunde,

Ihr erinnert Euch: wir haben noch das Thema mit den medullaren Leitbündeln nach Metcalfe & Chalk offen (Bilder 13 und 14). dazu bin ich heute noch mal auf die Jagt gegangen.

Typisch ist der Bau einer Gabelung: in der Blattachsel entspringt der abzweigende Spross, so wir wir es aus Bild 3 kennen, das ich hier noch einmal zeige:

Bild 28: Sprossgabel mit Blatt und Beschriftung
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241739_58154627.jpg)
Im gekennzeichneten Bereich habe ich insgesamt 11 Schnittebenen gemacht. Immer 6 Schnitte a 60 µm, 200µm Vorschub und so weiter. Dazu gleich; schauen wir uns die Situation erst einmal im Längsschnitt (Auflicht) an:

Bilder 29a&b: Längsschnitt durch die Srossgabel, beide Seiten, mit Beschriftung
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241739_35529478.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241739_47422476.jpg)
Anhand der hellen Streifen (Xylem) kann man den Verlauf der Leitbündel erkennen, aber die Strukturen sind für einen Beweis zu klein.

Lieber Hans-Jürgen, wenn du hier mit liest: vielleicht magst du einmal ein sauberes Präparat von solchen Längsschnitten machen und die Bilder hier zeigen, das bekommst du viel besser hin wie ich.

Lieber Bob, ich hab' dich nicht vergessen. Die Bilder 29 wurden auch mit dem Präparationsmikroskop und dem NexYZ gemacht:

Bild 30: Der Aufbau für die Bilder 29
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241739_65273341.jpg)
Eine Vorstellung des NexYZ von Celestron findet sich auch auf der Webseite des MKB: Link (http://www.mikroskopie-bonn.de/bibliothek/mikroskopische_technik/274.html)

Nun zu den 11 Bildern des Serienschnitts. In den Bildern findet Ihr in roten Kreisen zwei prominente medullare Leitbündel, sodass sich ihr Verlauf in der Serie nachverfolgen lässt. Blau eingekreist eine Stelle, an der sich ein breiter Phloemstreifen bildet, hier trennen sich m.E. die Leitgewebe des Seitensprosses von denen des Sprosses. Grün dann die Blattspur, die zum Blattstiel führt. Diese ist sehr schräg angeschnitten, was der Lage des Blattstiels gut entspricht.

Bilder 31a-k: Die Schnittserie durch die Sprossgabel
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241739_58961324.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241739_1495183.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241739_61302538.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241739_30376100.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241739_37460558.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241739_59487907.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241739_23085090.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241739_6964596.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241739_17113003.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241739_30544512.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241739_44365459.jpg)
Anhand der Serie nehme ich, dass sich unterhalb einer Sprossgabel zwei stärker ausgeprägte medullare Leitbündel zeigen, aus denen sich im Verlauf der Gabelung die dem Hauptspross zugewandte Seite des Leitbündelrings des Nebensprosses bildet, während die Blattspur aus den außen liegenden Leitgeweben des Hauptsprosses besteht aus der wiederum auch die Leitgewebe der vom Hauptspross abgewandten Seite des Nebensprosses entstehen.

Zur Zeit habe ich gut 80 Schnitte im AFE, nach der Präparation werden wir noch mal genauer hin schauen, zumindest, wenn Ihr Lust habt. :)

Bild 32: Die Serie fixiert for sich hin ... ;)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241739_7044526.jpg)

Auch hier gilt: Anregung und Kritik ist sehr willkommen!

Herzliche Grüße
Jörg

Lieber Jörg,

wir haben Glück gehabt, die Pflanzenproben meiner  Garten-Melde Atriplex hortensis sind noch nicht entsorgt.


Bild 01 ungefärbter Schnitt, Garten-Melde Atriplex hortens
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241754_11404313.jpg)

Auflichtbeleuchtung Fluoreszenz iLED 455 nm
LED Modul 455 nm
Reflektormodul FL mit Filtersatz 67
Erregerfilter: BP 470 nm
Strahlenteiler: FT 477 nm
Emission (Sperrfilter): LP 485

Bild 02 Autofluoreszenz, Garten-Melde Atriplex hortens
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241754_64923656.jpg)

Bild 03 Autofluoreszenz, Garten-Melde Atriplex hortens
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241754_44624228.jpg)


Gefärbte Schnitte folgen.

Mit freundlichem Gruß

Hans-Jürgen

Lieber Jörg,

hier die versprochenen gefärbten Längsschnitte.

W-3A-Färbung nach Wacker (Acridinrot-Acriflavin-Astrablau)

Bild 04 Garten-Melde Atriplex hortens

(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241767_17654054.jpg)

Bild 05 Garten-Melde Atriplex hortens

(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241767_52727599.jpg)

Bild 06 Garten-Melde Atriplex hortens

(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241767_14347911.jpg)

Auflichtbeleuchtung Fluoreszenz iLED 455 nm
LED Modul 455 nm
Reflektormodul FL mit Filtersatz 67
Erregerfilter: BP 470 nm
Strahlenteiler: FT 477 nm
Emission (Sperrfilter): LP 485

Bild 07 Garten-Melde Atriplex hortens

(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241767_51393439.jpg)

Bild 08 Garten-Melde Atriplex hortens

(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241767_26756241.jpg)

Bild 09 Garten-Melde Atriplex hortens

(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/241767_23264094.jpg)

Gruß

Hans-Jürgen

Lieber Hans-Jürgen,

vielen Dank für Deine schönen Längsschnitte! Allerdings ging es mir um Schnitte durch eine Sprossgabel, um dort den Verlauf der medullaren Leitbündel, also der Bündel, die hinter dem klassischen Leitgewebering im Markparenchym liegen, zu verfolgen.

Hast Du da ggf. auch noch Aufnahmen parat? Falls nicht und wenn Du Lust hast, solche Schnitte zu machen, könnte ich Dir auch fixierte Proben zuschicken.

Herzliche Grüße
Jörg

Lieber Jörg,

dass Du Längsschnitte von einer Sprossgabel sehen möchtest, habe ich schon verstanden, leider fehlt mir das Material.

Ich habe Dir ein eMail geschrieben.

Gruß

Hans-Jürgen

Lieber Hans-Jürgen,

kein Thema, ich leg' mal einige Sprossgabeln in AFE. Wenn Du magst und es bei Dir zeitlich passt, melde Dich einfach kurz, ich schicke sie Dir dann gerne zu.

Liebe Pflanzenfreunde,

ich habe heute die gefärbten Schnitte eingedeckt und versucht, sie wieder in eine sinnvolle Reihenfolge zu bringen. Beim nächsten Serienschnitt trenne ich die einzelnen Ebenen gleich auf :(
Immerhin musste ich mich sehr intensiv mit den Schnitten beschäftigen und dabei sehe ich grundsätzlich zwei Möglichkeiten für den Verlauf der beiden prominenten medullaren Leitbündel unterhalb der Gabelung:
- Sie bilden den dem Hauptspross zugewandten Teil des Leitbündelrings vom Nebenspross
  Aus dem Leitbündelring des Hauptsprosses unterhalb der Gabel bilden sich die Leitbündel der Blattspur und der dem Hauptspross abgewandte Teil des Leitbündelrings vom Nebenspross.
  Das ist die erste Idee, die ich weiter oben bereits angesprochen habe.
- Sie bilden oberhalb der Gabel den zum Nebenspross gewandten Teil des Leitbündelrings vom Hauptspross.

Für beide Ideen gibt es Anzeichen in der Schnittserie, der Verlauf der Bündel ist nicht ganz einfach zu deuten.
Anhand der Schnitte sieht es aber nicht so aus, als ob die medullaren Leitbündeln in die Blattspuren über gehen, wie bei Metcalfe und Chalk vermutet.

Was denkt Ihr? Wie ließe sich das eine oder andere noch prüfen?

Allen einen schönen Sonntag und herzliche Grüße
Jörg

Lieber Jörg,

nur als kurzer Einwurf zur Weißen Gänsefuß. Er ist bekannt als GUTER HEINRICH und diente in schlechten Zeiten als Spinatersatz. Hab ihn gestern als gesundes "Topping" kleingeschnitten über meinen Brokkoliauflauf gestreut. Er wächst bei mir im 2. Stock in einem Pflanztrog.  ;)

Herzliche Grüße

Liebe Regi,
ich darf Dich da bitte korrigieren! Mein pflanzlicher Namensvetter heißt Chenopodium bonus-henricus. Das ist der Gute Heinrich! Er hat spießförmige, ganzrandige Blätter, bastardisiert aber gern mit anderen Chenopodiumarten
Beste Grüße
Heinrich

Lieber Jörg,

die Sprossgabeln in AFE kannst Du mir gerne schicken.
Bin gespannt, wie das Material sich schneiden lässt.

Gruß

Hans-Jürgen

Liebe Regi, lieber Heinrich,

es schaut so aus, als ob man die Gänsefüße - genau wie die Gartenmelde - lecker zubereiten könnte. In der Beschreibung habe ich eingangs ja auch darauf hingewiesen. Meine Funstelle ist ein Ruderalstreifen an einer Straße auf dem Weg zu unserem Supermarkt. Zu viele Hunde - wenn Ihr versteht, was ich meine. ;)
Gut, wenn man seine Pflänzchen wie Regi auf dem Balkon hat.

Lieber Hans-Jürgen,

in der neuen Woche werde ich die Nebenwurzel schneiden und bei der Gelegenheit die Sprossgabeln fixieren. Ich denke, Anfang der komemnden Woche bekommst Du Post. Bitte sende mir dazu Deine Adresse per PN. Auf jeden Fall schon mal vielen Dank, dass Du die Längsschnitet machen möchtest. Lass Dir ruhig Zeit!

Allen herzliche Grüße
Jörg

Lieber guter Heinrich,

unter Laien haben wir wohl diesen Unterschied nicht gekannt. Danke für die Aufklärung. Meine Pflanzen sind wohl der Weiße Gänsefuß, hier mal zwei Bilder.

Herzliche Grüße
Regi

liebe regi,

ja, das schaut nach dem Weißen Gänsefuß aus, die Blattform ist der beste Hinweis. Leider hybridisieren die Gänsefüße sehr gerne - so ganz sicher kann man sich nie sein.

Herzliche Grüße
Jörg

Hallo Jörg!

Wieder ein interessanter Beitrag mit schönen Schnitten und Bildern (ebenso die Längsschnitte von Hans-Jürgen)!

Faszinierend auch das Thema mit den Calciumoxalat Kristallen - Nierensteine sind ja bei uns ehr weniger beliebt, da machen sich Pflanzen dieses ja etwas sinnvoller zu Nutze.  ;)
Auch wenn ich noch nicht so ganz verstehe wie das Fraßverteidigung dann wirkt. Wie auch immer, wieder was dazugelernt.

BTW ... diese Schneidehilfe ist ja auch eine tolle Idee.

Danke für den lesenswerten Beitrag!

Viele Grüße,
Karl

Lieber Karl,

vielen Dank für Dein Lob! Ja, die Schneidehilfe ist besonders bei weniger stabilen Proben nützlich. Eine gute Idee von Bob.

Calciumoxalat ist oft nur Abfallentsorgung (Rhomben, Drusen ...). Für den Fraßschutz kommen nur Raphidenbündel in Frage und das ist dann schon eine recht wirksame Waffe gegen kleine Pflanzenfresser wie z.B. Raupen. Die Raphiden verletzen ihre Darmwand, was zu Wachstumsstörungen und insgesammt schwächeren Individuen führt. Aber die Abwehr der Pflanzen ist viel perfieder: neben den Calciumoxalat-Speeren enthalten sie oft auch ein Enzym, das das verletzte Darmgewebe zerstört. Und dies führt dann teils recht schnell zum Tod der Vielfraße.

Dazu gibt es eine Arbeit aus dem Jahr 2014:
"Synergistic Defensive Function of Raphides and Protease through the Needle Effect" von Kotaro Konno, Takashi A. Inoue und Masatoshi Nakamura, der hier zu finden ist: http://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0091341.

Herzliche Grüße
Jörg

Liebe Pflanzenfreunde,

hier noch eine Ergänzung zur Wurzel des Weißen Gänsefußes. Die Schnitte in den Bildern 23 bis 25 habe ich an der Hauptwurzel direkt unterhalb des Hypokotyls gemacht. Nun wollte ich sehen, ob die alternierende Anordnung von Xylem und Phloem vielleicht schon zu diesem gehört oder ob sie sich auch in einer Nebenwurzel zeigt.
Kurz: bei Chenopodium album zeigen die Wurzeln den beobachteten Aufbau ausgehend von einer ursprünglich wohl diarchen Anatomie:

Bilder 35a-c: Ungefärbter Querschnitt einer Nebenwurzel, Bild 35b mit Beschriftung, 35c im Polarisationskontrast. Alle Bilder gestapelt. 
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/242197_11404313.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/242197_64923656.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/242197_44624228.jpg)

Und nun gefärbt:

Bilder 36a-e: Querschnitte gefärbt mit W3Asim I, Bilder 36b&e mit Beschriftung, alle Bilder gestapelt
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/242197_17654054.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/242197_52727599.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/242197_14347911.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/242197_51393439.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/242197_26756241.jpg)
Die Bilder 36a&b zeigen eine Nebenwurzel, die hier längs angeschnitten ist. Die Bilder 36d&e lassen den ursprünglichen diarchen Aufbau der Wurzel erkennen.

Wie immer gilt auch hier: Anregung und Kritik sind willkommen.

Herzliche Grüße
Jörg

Zitat von: Fahrenheit in November 18, 2018, 20:15:02 NACHMITTAGS
es schaut so aus, als ob man die Gänsefüße - genau wie die Gartenmelde - lecker zubereiten könnte.

So ist es. Ich habe es bereits an anderer Stelle erwähnt. Neben Wiesenbärenklau eins der leckersten Wildgemüse, das ich kenne.

Eigenartigerweise benimmt sich der gute Heinrich so, wie man es erwartet: man dünstet ihn, würzt, salzt und isst ihn. Er ist insgesamt auch etwas nobler in der Konsistenz als Gänsefuß.
Der Gänsefuß hingegen ist wesentlich leckerer, wenn er nochmal aufgewärmt wird. Also erst dünsten und danach weiterverarbeiten als Pastasoße, Auflauf etc.
Fett in Form von Butter oder Sahne verträgt er reichlich und wird dadurch noch runder.

Übrigens war ich immer davon ausgegangen, daß er zu den Chenopodiaceae gehört, also zu den Gänsefußgewächsen. Nun habe ich dank Wikipedia erfahren, daß diese inzwischen in die Amaranthaceae eingegliedert wurden. Danke für den (unbabsichtigten) Hinweis darauf.

Wolfgang

Lieber Wolfgang,

zwischenzeitlich bin ich wirklich neugierig auf das Gänsefußgemüse. Da heißt es im kommenden Frühjahr nur noch ein Vorkommen zu finden, das nicht an einer Hunderennstrecke liegt.  ;)

Herzliche Grüße
Jörg

hallöchen jörg !
"Anregung und Kritik ist sehr willkommen!"...
wortlos mit staunend offenem mund sitzt man vor den fotos und kann nix mehr sagen,
schon gleich keine kritik!
danke fürs zeigen :-)
güntherdorn

Lieber Günther,

auch Dir herzlichen Dank für Dein Lob!
Jörg

Lieber Jörg,

die Längsschnitte von der Sprossgabel (Chenopodium album) sind jetzt endlich fertig.

(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/243002_44419000.jpg)

(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/243002_52697953.jpg)

(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/243002_22597652.jpg)

(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/243002_10261382.jpg)

(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/243002_59109011.jpg)

(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/243002_42659827.jpg)

(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/243002_40644060.jpg)

(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/243002_17043416.jpg)

(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/243002_28756230.jpg)

Gruß
Hans-Jürgen

Lieber Hans-Jürgen,

vielen Dank für die gelungene Präparation und die schönen Aufnahmen!

Ich finde, man sieht sehr schön, dass das Blatt nicht durch die medullaren Leitbündel versorgt wird. Einige kleinere ziehen sogar an der Sprossgabel vorbei nach oben.

@Detlef: wie schaut Deine Interpretation aus?

Allen herzliche Grüße und einen schönen Abend am zweiten Advent
Jörg

Lieber Hans-Jürgen,

auch hier noch einmal vielen Dank für Deine Längsschnitte! Ich habe mit W3Asim I gefärbt und wunderschöne Präparate erhalten.

Hier zwei Bilder aus Deinen Schnitten, die zeigen, dass sich die medullaren Leitbündel auf Höhe der sprossgabel im Hauptspross verzweigen und in ihm weiter laufen:

Bilder 37a,b: Verzweigende medullare Leitbündel in der Sprossgabel von Chenopodium album
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/243976_49584532.jpg)
(https://www.mikroskopie-forum.de/pictures009/243976_19699911.jpg)

Der abzweigende Spross liegt in beiden Aufnahmen oben ausserhalb des Bildausschnitts.

Herzliche Grüße
Jörg

Einen hab' ich noch! :)

Im Thread ist die von Bob entwickelte Schneidehilfe etwas unter gegangen. Ich habe dem nützlichen kleinen Helfer auf der Webseite des MKB einen eigenen kleinen Eintrag gegönnt, wer möchte, kann hier nachlesen:
http://www.mikroskopie-bonn.de/bibliothek/botanische_mikrotechnik/282.html (http://www.mikroskopie-bonn.de/bibliothek/botanische_mikrotechnik/282.html)

Herzliche Grüße
Jörg